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兔巴氏杆菌病的诊断及防控措施

 我心飞扬695 2014-09-23
兔巴氏杆菌病的诊断及防控措施 1 1 2 王文杰 段巨刚 石 刚 1 1 2 (1.河北东光县农业局 ,河北沧州 061600; 2. 河北东光县职业技术教育中心,河北沧州 061600) 摘要:兔巴氏杆菌病是由多杀性巴氏杆菌引起的各种兔病的总称。临床症状表现以全身败 血病、传染性鼻炎、流行性肺炎而多见,是严重危害养兔业重要的传染病之一。 本文从该 病的病原、流行病学特点、症状与病变、诊断与防控方面进行阐述,旨在为兔场科学防治巴 氏杆菌病提供参考。 关键词:兔巴氏杆菌病;诊断;防控措施 兔巴氏杆菌病(Pasteurellosis)又名出血性败血症,是由多杀性巴氏杆菌引起的一种 多型性、散发性或地方流行性、细菌性传染病 【1,2】 。由于病菌的毒力、感染途径以及病程长 短不同,其临床症状和病理变化也不同。主要有全身败血病、传染性鼻炎、 、地方流行性肺 炎、结膜炎、中耳炎、生殖器官感染和脓肿。 【3,4】 家兔对多杀性巴氏杆菌十分敏感,发病率 【5】 高达 60%以上, 若不及时采取有效措施, 易引起大量发病和死亡, 郭永刚 【6】 等、 李佳丽 【7】 等对兔巴氏杆菌的诊断进行了报道, 一致认为本病是严重危害养兔业的重要传染病之一; 随 着养兔生产高度集约化,本病发生呈上升趋势,另外由该病引发兔只死亡、生长缓慢、饲料 报酬降低及药物防治费用增加等, 给养兔业造成了严重经济损失, 应引起广大养殖户及有关 部门的足够重视。 1 病原 兔巴氏杆菌病的病原为多杀性巴氏杆菌,呈革兰氏阴性 、两端钝圆、细小、卵圆形的 短杆状菌 ,大小为(1-1.5)×(0.25-0.5)μm。单个存在,有时成双排列。用瑞氏染色 或亚甲蓝染色呈典型两级染色。无鞭毛,不形成芽孢,新分离的强度菌株有荚膜,但经培养 后荚膜迅速消失。本菌为需氧或兼性厌氧菌。 该病菌存在于病兔的血液、内脏器官、病变局部和一些外表健康的家兔的上呼吸道粘 膜及扁桃体内。 该病菌对外界环境因素的抵抗力不强,在眼光下暴晒 10min,或 56℃加热 15min ,或 60℃加热 10min 可被杀死。在干燥空气中 2-3d 死亡,在厩舍及粪便中能存活一个月左右, 在尸体内能存活三个月。一般常用的消毒药都能将其杀灭。1%福尔马林、1%石碳酸、1%漂白 粉、01%升汞等溶液,经 3-5min 即能杀死。对青霉素、链毒素、四环素、土霉素、磺胺类及 许多新的抗菌药物敏感。 1 该菌在鲜血和血清培养基上生长良好,但在普通培养基上不能生长,由于巴氏杆菌毒 力强弱不同,呈三种菌落形态。从败血型死亡的兔子新分离的毒力强大的菌株,在血清琼脂 表面上培养 24h 后长出菌落,在折射光下有荧光、圆整、半透明、 细小。 在肉汤内一致浑浊, 称光滑型(S 型) 。从慢性病例或带菌者所分离的菌株,中心多半为不透明的粘性大菌落, 无荧光。在肉汤内一致浑浊,称粘液型(M 型) 。从带菌者分离的菌株,常出现粗糙而干燥 的菌落。在肉汤内产生颗粒状沉淀物,称粗糙型(R 型) 。 【8】 2 诊断 根据流行病学、临床症状与病变特点,可作出初步诊断,进一步确诊需进行实验室检 查。败血型和肺炎型可从心血、脾、肝或体腔惨出物等取病料做细菌学检查,其他病例主要 从病变部位、脓汁、渗出物和呼吸道、阴道分泌物中检查病原。对慢性病例和健康带菌的家 兔可采取血清学方法进行诊断 2.1 涂片镜检 无菌取病兔心血肝脾等有病变组织作涂片,自然干燥,火焰固定,分别瑞氏及革兰氏 染色、镜检。可见到单个或多个短杆菌散在排列。瑞氏染色细菌呈蓝色的短小杆菌,两极着 色,周边有淡红色的荚膜;革兰氏染色呈两极着色的阴性短杆菌。 2.2 细菌分离培养 ①无菌取病兔心血和肝脾,接种于鲜血琼脂平板和麦康凯平板上,37℃培养 24h,结果 麦康凯平板上无任何菌落,而鲜血琼脂平板上则可见许多淡灰色、圆形湿润、露珠样的小菌 落,菌落周围不溶血。 取典型菌落做革兰氏染色,镜检,可见该菌为革兰氏阴性,两极浓染, 两端钝圆,有荚膜的短杆菌。然后,挑取镜检后的菌落进行纯培养,制得分离菌株 ②将分离菌株接种到普通琼脂上生长出菌落形态为灰白色、 针尖大小的菌落或不生长。 ③将分离菌株划线接种于血清琼脂平板和麦康凯平板,37℃培养 24h,可长成淡灰色, 表面光滑闪光、边缘整齐、露珠样小菌落,直径约 2-3mm,有臭味,将该血清平板放于显微 镜下,于 45 折光观察,可见菌落呈蓝绿色带金光,边缘有窄的红黄光带,为 Fg 型菌落。 ④将分离培养菌株接种于肉汤,37℃培养 24h,培养物呈轻度混浊,于管底部生成黏稠 沉淀,表面灰白色形成菌环。 ⑤将分离菌株接种到三糖铁培养基上 37℃恒温培养 24h,其底部变黄。 2.3 生化试验 将所分离的菌株分别接种于各种生化培养基,做鉴定培养,结果;该菌株能分解葡萄 糖、蔗糖、半乳糖、阿拉伯糖、甘露醇,不发酵乳糖、木糖、鼠李糖、山梨醇、枸橼三钠; 靛基质反应、硝酸盐还原反应、吲哚试验、接触酶试验、血浆凝固酶试验、氧化酶实验、产 :MR、VP 酸、产生 H2S 和氨均为阳性(也有试验不产气,可能是由于菌株间的差异造成的) 。 【9】 。 2 试验均为阴性;尿素酶试验为阴性;不液化明胶,石蕊牛乳无变化,三糖铁可生长,底部变 黄 [11] 。 2.4 动物回归试验 2.4.1 小鼠感染试验 取新分离菌株纯培养,制成细菌纯培养液(获取病兔的肝组织,用生理盐水做成 1:10 的混悬液) ,接种小鼠 5 只,每只腹腔注射细菌纯培养液(或混悬液)0.2ml,24-48h 全部 死亡。解剖该死亡小鼠,临床症状、病理变化均与自然发病兔相同。去心血、肝组织进行接 种培养,可见典型菌落,经染色,镜检,可见革兰氏阴性两极浓染的小杆菌。 2.4.2 家兔回归试验 取新分离菌株纯培养,制成细菌纯培养液(或取病兔的肝组织,用生理盐水作成 1:10 的混悬液) ,接种家兔 2 只,每只皮下注射细菌纯培养液(或混悬液)0.2 ml,24-48h 全部 死亡。解剖该死亡兔,临床症状、病例变化均与自然发病兔相同。取心血、肝组织进行接种 培养,可见典型菌落,经染色,镜检,可见革兰氏阴性两级浓染的小杆菌 2.5 药敏试验 选用 14 种抗菌药敏纸片,按照美国 NCCLS 药敏试验纸片扩散法规,检测分离菌对这些 抗菌药物的敏感性。结果分离菌株高敏的药物为:乙酰螺旋霉素、氨苄青霉素、链霉素、复 方新诺明、庆大霉素、氟苯尼考;对分离菌株中敏的药物是:丁胺卡那、红霉素,对分离菌 株不敏感的药物是:四环素、强力霉素、羟苄青霉素、痢特灵、多粘菌素及丙氟哌酸。 2.6 血清学试验 试管法:将待检兔的血清做成不同稀释度,加入等量诊断抗原。凝集价在 1:40 以上 者均为阳性反应。 玻片法:取被检血清 0.1 ml 加于玻片上,随后加入等量抗原,于 15-20℃温度下进行 摇动玻片使抗原与被检血清均匀混合。阳性反应在 1-3min 内,出现絮状物,液体透明 [13] [12] 。 。 3防控措施 3.1 预防 3.1.1 建立无多杀性巴氏杆菌种兔群是防治本病的最好办法。这种兔群是通过选择无鼻炎临 床症状,并经常对鼻腔连续进行细菌学检查,多次的血清抗体检测,选留无多杀性巴氏杆菌 的种兔建立起来的。有条件的兔场用剖腹取胎,或自然分娩后,立即将仔兔隔离进行人工喂 养的方法,建立无特定病原体兔群则更为理想。 3.1.2 坚持自繁自养原则, 不从疫区引种或购买商品兔, 引种兔时要严格检疫并隔离观察 30 天,无鼻炎临床症状,进行细菌学和血清学检查,确定无病后方可并群。 3.1.3 加强饲养管理,增强机体的抗病能力。家兔是草食动物,应以青粗饲料为主,精料为 3 辅,饲料要注意营养成分合理,符合饲养要求。由于饲料的季节性不同,在改变饲料时要逐 步过渡,约 1 周左右可全部更换。饲喂时要定时定量,使家兔养成定时采食和排泄的习惯, 同时根据家兔的年龄、体重、个体差异,季节特点及兔体对饲料的需要,制定每兔每天的采 食量,不可忽多忽少。饲料和饮水必须清洁卫生。 3.1.4 消除一切应激因素 在饲养过程中采取积极防范措施,创好良好的饲养条件,把应激因素减少到最小程度。 兔舍应与其他畜禽场分开,严禁混养,控制饲养密度,保持安静,清洁舒适,通风良好,冬 天要保温防寒,夏天要降温防暑,雨季要防潮。 3.1.5 搞好清洁卫生和定期消毒,减少疫病感染机会 兔舍和兔笼内外要经常打扫消毒,保持兔舍的干燥、清洁卫生,同时定期进行消毒,食 槽、水槽及其饲养用具可选用百毒杀剂进行消毒。经常检查兔群,发现病兔立即隔离封锁, 严格淘汰病兔,兔舍及周围环境可用 10%-20%石灰乳、2%-3%烧碱水、0.3%过氧乙酸、1%漂 白粉等进行消毒,器械用具可用 2%-3%烧碱水或 0.3%来苏儿消毒,兔笼最好用火焰消毒,也 可用 2%石灰乳、3%的来苏儿、2%-3%烧碱水消毒。对病死兔及其污染物作无害化处理。病兔 使用高敏药物治疗,对健康兔中的易感兔群紧急注射巴氏杆菌疫苗。 3.1.6 药物预防 每 50Kg 饲料中加 8-10g 乙醇,均混合于饲料中饲喂,可获得较好的预防效果。 3.1.7 预防注射 30 日龄以上的家兔首免兔巴氏杆菌灭火苗,皮下注射 1 ml,间隔 14 天后在皮下注射 1.5ml ,免疫期 3—6 个月,种兔每年注射 3 次。也可使用兔瘟巴氏杆菌病二联苗注射,20 日龄以上的家兔,每兔皮下注射 1 ml,7d 产生免疫力,间隔 20d 后再皮下注射 1.5m1,免疫 期 3—6 个月。常年每间隔四个月注射一次.发生疫情时紧急预防注射,每只 2m1。 3.1.8 严禁其他动物出入兔场,定期灭鼠灭蝇,杜绝或减少传染来源,切断一切传播途径。 3.2 治疗 阿莫西林钠(青霉素、氨苄青霉素的换代产品)肌注,10-15mg/kg,一次/d,连用 3d; 或用链霉素肌注,0.5-1IU/Kg,2 次/d,连用 5d;或用链霉素每只兔 5—10 万 IU、青霉素 2—5 万 IU,混合一次肌注,2 次/d,连用 3-4d;或用庆大霉素每兔 2—4 万 IU 一次肌注,2 次/d, 连用 3d,或用核能 2000 (主要成分为长效土霉素) 肌注 0.5m1/Kg,连用 2-3d;或用氟苯尼考 注射液肌注, 0.2—04 ml/Kg, 次/d,连用 2d;或用氟哌酸注射液肌注 0.5—1 ml 次, 次/d, 1 2 连用 5d;或用红霉素肌注,8mg/Kg,2 次/d,或口服喹乙醇,25-50mg/Kg,2 次/d,连用 2-3d; 或用氟氧沙星肌注 0.2—0.3ml/Kg,2 次/d,连用 5d;或用磺胺嘧啶肌注 0.05—0.2g/kg,2 次/d,同时配合口服土霉素,25-40mg/Kg,混在饲料喂给,1 次/d,连用 5d,或用磺胺甲基嘧 啶,内服量 0.1mg/Kg,1 次/d,肌注量 0.007g/Kg,2 次/d,连用 4d;也可在饲料中拌入 0.2%诺 氟沙星,连用 3-5d。在使用抗生素治疗的同时,可用 5%葡萄糖 10-20ml 加维生素 C1ml 静 4 脉注射。使用磺胺类药物时应加等量碳酸氢钠,预防不良反应的发生。 对慢性呼吸道症状的病兔,用青霉素、链霉素滴鼻,每毫升各 2 万 1U,每 2 次/d,连用 5d;也可用庆大霉素、氯霉素滴鼻。眼结膜炎可用链霉素眼药水滴眼,1 次 3-5 滴,两次/d; 对局部巴氏杆菌感染病兔施行外科疗法,切开成熟的脓肿排脓,用 0.1%新洁尔灭或 3%双氧 水冲洗,再涂以红霉素软膏或撒布消炎粉,或冲洗后以 0.1%利凡诺灭菌纱布引流。 急性病例,皮下注射抗出败多价血清,每千克体重约 6ml,8-10h 后再重复注射一次, 有显著疗效,但此法成本较高,只适合高价种兔。 另可选用三黄汤或双花剂中药治疗 三黄汤处方: 黄连、 黄芪各 10g 黄柏 20g,加水 500ml 煎成 20ml, 每次每只喂 10-20ml ,2 次/d,连用 3d. 双花剂处方:金银花 9g,野菊花 6g,加水 200ml 煎成 100ml,每次每只喂 10-20ml, 2 次/d,连用 3d。 对于神经症状的病兔,除用上述药物外在肌注维生素 B12 和维生素 B1 各一支,一次/d, 连用 3d。 参考文献 1.蔡宝详.家畜传染病学(第四版) (M)北京:中国农业出版社,2001. 2.杨树华.兔巴氏杆菌病的诊断及防治【J】.中国兽医杂志,2002,8(4):55-56 3 鲍国连.兔病签别诊断与防治(M) 。北京:金盾出版社,2005:15-20 4 陶岳荣.獭兔高效益饲养技术(M).北京:金盾出版社,2009:139-141 5 周春凤.兔巴氏杆菌病的诊治【J】 。山东畜牧兽医,2001,32(2) :26-27 6 郭永刚.陈益,,兔巴氏杆菌的诊断【J】 。郑州牧业工程高等专科学校学报,2007, 27(1) :18,19。 7 李桂丽.兔巴氏杆菌病的防治【J】 ,吉林畜牧兽医,2010 ,31(5) :43,44. 8 穆传军.巴氏杆菌病的综合防治【J】 ,养殖技术顾问,2008(12):133. 9 张达纪。兔巴氏杆菌病的防治【J】 ,中国养兔杂志,2006(3):9-11. 10 王 刚.一起兔巴氏杆菌的诊治报告【J】 。养殖技术顾问,2011 (4) :174 11 展建平.兔巴氏杆菌病的防治【J】.医学动物防治,2006,,22(11) :858,859 12 刘德权.兔巴氏杆菌病的诊断与防控 【J】 .畜牧与饲料科学, 2009, (9) 30 :182-183 13 郭慧霞.一例兔巴氏杆菌病的诊断【J】.中国畜牧兽医,2010,37(7):205-206。 5

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