分享

【呼吸专题】第二期:呼吸道干/祖细胞有几种?

 ccchengphd 2018-01-10

在呼吸专题系列的第一期里我们聊了雾霾的危害。大家都知道呼吸系统是首当其冲遭受雾霾危害的器官。那么,我们的呼吸系统具有怎样的防御功能来抵制雾霾损伤呢?那就是在损伤情况下呼吸道具有的干/祖细胞的自我增殖和分化功能。人呼吸道和肺内的干/祖细胞有几种?读了这篇简短综述,就会让您一目了然。

人类在呼吸过程中,吸入外界空气,空气中的氧气通过呼吸进入循环系统,同时体内细胞产生的二氧化碳通过肺泡和毛细血管的气体交换排到外界空气中。人体呼吸道可分为传导区和呼吸区。传导区包括鼻腔通道、气管、主支气管、肺内支气管和细支气管,具有加温、湿润、过滤等保护功能,不参与换气流程。从气管到末端细支气管, 随着呼吸道的不断分支,各级分支的直径和长度逐步缩小/缩短。呼吸区包括呼吸性细支气管、肺泡管和肺泡囊。呼吸区是肺腔内吸入的空气与肺毛细血管中的血液进行换气(经肺通气进入人肺泡的新鲜空气与血液进行气体交换,氧气从肺泡顺着分压差扩散到静脉血,而静脉血中的二氧化碳,则向肺泡扩散)的场所。1,2


从鼻腔通道到肺泡囊的整个人体呼吸道覆盖着一层连续的上皮细胞,但是传导区和呼吸区的上皮细胞在形态和细胞成分上却各有不同。在包括鼻腔通道、气管和支气管在内的传导区的最近端部位,呼吸道上皮细胞的形态为假复层纤毛柱状上皮细胞。距离传导区越远(分支增多,呼吸道内径缩小),此上皮细胞的厚度越薄,且在小呼吸道(细支气管)形成类似立方上皮细胞。大呼吸道上皮细胞主要由三种细胞类型构成:可分泌粘液的杯状细胞、可通过与顶部纤毛进行协同摆动而促进粘液运动的纤毛细胞,以及在基底膜上排列且不与上皮细胞顶面接触的基底细胞。细支气管内的立方上皮细胞由两种细胞类型构成:分泌细胞和纤毛细胞,但是其含有的纤毛细胞数量要比近端大呼吸道所含数量要少。肺泡上皮细胞分为I型肺泡上皮细胞和II型肺泡上皮细胞(AEC)。肺泡细胞通过毛细血管的内皮细胞基膜,与内皮细胞融合,形成换气屏障。


呼吸道上皮细胞一直进行着缓慢而持续的动态代谢平衡。当发生中轻度损伤,呼吸道上皮细胞会及时做出反应,重建上皮细胞层,恢复其正常的结构和功能。这个上皮细胞修复的过程主要由呼吸道干/祖细胞来完成。3-10


有证据表明, 不同种类的上皮干/祖细胞分布在肺部的位置不同:基底细胞(Basal Cell)分布在气管和大支气管12分泌细胞(Club Cell)分布在支气管和细支气12肺泡干细胞(BASC)分布在细支气管肺泡管连接处(BADJ);13  II型肺泡上皮细胞则分布在肺泡区。14

基底细胞 (Basal Cell)

越来越多的证据表明,基底细胞为分布在气管支气管部位的多能祖细胞,在出生后不同发育阶段和稳态周期内,既可进行自我更新,又可形成纤毛细胞谱系和分泌细胞谱系,并且可以在上皮细胞受损后,进行修复。以上认知是从体内遗传谱系示踪研究和体外培养(气液界面(ALI)培养和三维球状形态(克隆形态)培养中)总结出来的。在运用此类培养技术,可以发挥单细胞自我更新和分化的潜能。这些方法均需用标志物对基底细胞进行精准标示,但是这些标志物对基底细胞祖细胞的功能上的重要性尚不明确。应用最广泛的基底细胞标志物有P63、IGTA6、NGFR、KRT5,KRT14。所有这些标志物中,最为常用的是KRT5和KRT14。KRT5可以在所有的基底细胞中进行标记,而只有当上皮细胞的代谢速率较低时,通常采用KRT14来标记出稳态子代基底细胞。23 这就说明:不同基底细胞间存在功能异质性,只有少数基底细胞能够形成多个成熟细胞谱系。根据KRT14-CreER追踪,对小鼠气管和支气管上皮细胞进行的谱系示踪研究的结果表明:在呼吸道受损的情况下,基底细胞子代可转化为多能或单能细胞。在对因强酸、洗涤剂或系统性萘摄入等各种介质摄入而使腔细胞受损,进而进行修复的过程中,用KRT5和KRT14进行标记的双阳性基底细胞,无论是单独存在或是以小集群形式存在的,均呈现出暂时性的数量增加。这一结果表明:当基底细胞被“激活”进行增殖时,KRT14标志物的表达水平上调。但是,还有研究结果认为所有的基底细胞均能进行多向分化,而且基底细胞祖细胞的分化命运是受到局部环境和损伤机制的影响11-19


分泌细胞 (Club Cell)

与人体肺部的再生疗法实际相关的一个问题是:基底细胞是否是唯一能有效修复假复层上皮细胞的细胞,或分化的细胞是否能在特定条件下去分化或转分化。在Rajagopal 实验室近期发表的一篇主要论文中,采用了一种方法专门杀死小鼠体内气管中的KRT5 标志物和基底细胞,在这种情况下,研究人员发现分化的 SCGB1A1 分泌细胞可返回到祖细胞状态,转而成为P63和 KRT5标记的双阳性基底细胞。这些基底细胞能够长期积蓄,与正常的KRT5 标记的祖细胞功能相似。通过体外培养,论文作者进一步证明:基底细胞之间的细胞间连接可以阻止表层分化细胞的去分化,但是还需对去分化的重新驱动程序的精准机制以及随后产生的干细胞功能进行进一步研究20


细支气管肺泡干细胞(BASC)

最细小的末端细支气管与肺泡之间的过渡区被称之为细支气管肺泡管连接处。小鼠体内的此部位包含纤毛细胞和分泌细胞,但是人体内的此部位所分布的细胞,尚不明确。将小鼠体内细支气管肺泡管连接处的少量细胞(每个气管有1~2个细胞)共同标记为Scgb1a1 (分泌细胞)和肺泡表面活性蛋白C(Sftpc),肺泡表面活性蛋白C是II型肺泡上皮细胞特有的一种蛋白。其结论为:此类双阳性细胞为细支气管肺泡干细胞。之所以被称之为细支气管肺泡干细胞,是因为当被荧光活化细胞分选方法所分离时,此类细胞会在培养皿中生成细支气管细胞和肺泡细胞。Kim及其同事进一步通过采用精致的3D克隆共同培养方法,证明了肺内皮细胞中的BMP4-NFATC1-TSP轴可以诱导细支气管肺泡干细胞分化成肺泡谱系30


II型肺泡上皮细胞(AEC2)

气体交换部位的主要上皮细胞类型包括:立方II型肺泡上皮细胞(主要生产和分泌表面活性蛋白)和扁平的I型肺泡上皮细胞(主要进行换气)。成年小鼠的肺泡部位的细胞新陈代谢一般比较慢,因此很难追踪到稳态的谱系关系。但是,在对肺泡细胞进行实验性损伤,或让其接受氧化应激作用的情况下,存活的细胞将快速增殖,并激活细胞修复机制。过去40年一直采用H3胸苷标记法进行的研究结果表明,当因组织内氧气过多或一氧化碳过多导致上皮细胞受损后,成年猴和小鼠的II型肺泡上皮细胞会进行增殖,并分化成I型肺泡上皮细胞。近期,针对体内遗传谱系示踪的研究肯定了成熟的II型肺泡上皮细胞有这种自我更新和分化能力。上述体内遗传谱系示踪研究采用与终末分化细胞(包括肺泡表面活性蛋白C和Lyz2)相关的基因驱动的Cre重组酶。在稳态的新陈代谢情况下,单个II型肺泡上皮细胞很少发生克隆性增殖,亦很少分化为I型肺泡上皮细胞。当博莱霉素和氧气过多对肺泡部位造成损伤之后,标记为II型肺泡上皮细胞的谱系分化为I型肺泡上皮细胞的比例明显增高14

近年来,干细胞和祖细胞谱系的识别以及这些细胞在成人体内的活动的相关研究发展很快。相对而言,分子水平的信号通路对细胞行为的调控方面的研究发展缓慢。  普遍认为,个体发育过程中使用的主要分子信号通路在肺部细胞修复过程中被激活而发挥着重要作用,但是这些观点需要进一步在生理或临床相关实验模型上测试证明。探索肺形成的机制,尤其是肺泡形成领域的研究,方兴未艾。支气管上皮的气液界面培养系统,和近几年流行起来的体外类器官培养(支气管类器官和肺泡类器官)系统为解决这些呼吸干/祖细胞领域的问题提供了最佳的技术支撑和研究平台。


呼吸专题的下一期,我们会具体谈一下呼吸道体外建模(包括气液界面培养法和3D类器官培养法)的历史,最新进展和应用。敬请关注!



跟您的同事和朋友分享这篇文章 / 长按二维码关注我们。 微信ID:STEMCELLTech


参考文献:

1. Berube K, et al. Altern Lab Anim 37: 89-141, 2009

2. Crystal RG, et al Proc Am Thorac Soc 5: 772-777, 2008

3. Borok Z, et al. Proc Am Thorac Soc 8: 215-222, 2011

4. Hogan BL, et al. Cell Stem Cell 15: 123-138, 2014

5. Kotton DN and Morrisey EE. Nat Med 20: 822-832, 2014

6. Rock JR and Hogan BL. Annu Rev Cel Dev Biol 27: 493-512, 2011

7. Rock JR, et al. Dis Model Mech 3: 545-556, 2010

8. Stripp BR and Reynolds SD. Proc Am Thorac Soc 5: 328-333, 2008

9. Wansleeben C, et al. Dev Biol 2: 131-148, 2013

10. Hackett TL, et al. Stem Cells 26(10): 2576-85, 2008

11. Reynolds SD, et al. Proc Am Thorac Soc 9: 27-37, 2012

12. Rock JR, et al. Proc Natl Acad Sci U S A 106: 12771-12775, 2009

13. Lee JH, et al. Cell 156: 440-455, 2014

14. Barkauskas CE, et al. J Clin Invest 123: 3025-3036, 2013

15. Cole BB, et al. Am J Pathol 177: 362-376, 2010

16.    Ghosh M, et al. Am J Respir Cell Mol Biol 45: 459-469, 2011

17. Ghosh M, et al. Stem Cells 31: 2767-2778, 2013

18. Ahmad S, et al. Am J Respir Cell Mol Biol 48: 94-104, 2013

19. Ghosh M, et al. Am J Respir Cell Mol Biol 45: 403-410, 2011

20. Tata PR, et al. Nature 503: 218-223, 2013

21. Giangreco A, et al. Am J Pathol 161: 173-182, 2002


    本站是提供个人知识管理的网络存储空间,所有内容均由用户发布,不代表本站观点。请注意甄别内容中的联系方式、诱导购买等信息,谨防诈骗。如发现有害或侵权内容,请点击一键举报。
    转藏 分享 献花(0

    0条评论

    发表

    请遵守用户 评论公约

    类似文章 更多