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实验入门之---免疫共沉淀(Co-IP)

 myhalic 2018-09-07

小编最近挺忙的,实验室各种事情要做,读研的都知道,就不多加唠叨了,研究做机制的,肯定会做到蛋白与蛋白之间的结合伴侣情况,转录激活功能等等,首先讲结合蛋白,就要涉及到免疫共测定实验。。好吧不多说了,上干货。


原理:免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)是以抗体和抗原之间的专一性作用,为研究蛋白质相互作用的方法 。

当细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留了下来。

如果用蛋白质X的抗体免疫沉淀X,那么与X在体内结合的蛋白质Y也能沉淀下来。

目前多用prorein A预先结合在argarose的beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的prorein A就能吸附抗原达到精制的目的。这种方法常用于测定两种目标蛋白质是否结合
  

其优点为:(1)相互作用的蛋白质都是经翻译后修饰的,处于天然状态;(2)蛋白的相互作用是在自然状态下进行的,可以避免人为的影响;(3)可以分离得到天然状态的相互作用蛋白复合物。

缺点为:(1)可能检测不到低亲和力和瞬间的蛋白质-蛋白质相互作用;(2)两种蛋白质的结合可能不是直接结合,而可能有第三者在中间起桥梁作用; (3)必须在实验前预测目的蛋白是什么,以选择最后检测的抗体,所以,若预测不正确,实验就得不到结果,方法本身具有冒险性。

二、准备工作:

1. 用预冷的PBS洗涤细胞两次,最后一次吸干PBS;
2. 加入预冷的RIPA Buffer(1ml/107个细胞、10cm培养皿或150cm2培养瓶,0.5ml/5×106个细胞、6cm培养皿、75cm2培养瓶)
3. 用预冷的细胞刮子将细胞从培养皿或培养瓶上刮下,把悬液转到1.5EP管中。
4. 4℃,12000g离心15-30min,立即将上清转移到新的离心管中。
5. 准备Protein A agarose,用PBS 洗3-4遍珠子,然后用PBS配制成50%浓度。
6. 每1ml总蛋白中加入100μl Protein A琼脂糖珠(50%)。
7. 4℃,14000g离心15min,将上清转移到一个新的离心管中,去除Protein A珠子。
8. (Bradford 法)做蛋白标准曲线,测定蛋白浓度,测前将总蛋白至少稀释1:10倍以上,以减少细胞裂解液中去垢剂的影响(定量,分装后,可以在-20℃保存一个月)。
9. 用PBS将总蛋白稀释到约1 μg/μl,以降低裂解液中去垢剂的浓度,如果兴趣蛋白在细胞中含量较低,则总蛋白浓度应该稍高(如10 μg/μl)。
10. 加入一定体积的兔抗到500μl总蛋白中。
11. 4℃缓慢摇动抗原抗体混合物过夜或室温2h
12. 加入100μl Protein A琼脂糖珠来捕捉抗原抗体复合物,4℃缓慢摇动抗原抗体混合物过夜或室温1h。
13. 3000rpm离心5min,收集琼脂糖珠-抗原抗体复合物,去上清,用预冷的RIPA buffer洗3遍(RIPA buffer有时会破坏琼脂糖珠-抗原抗体复合物内部的结合,可以使用PBS)。
14. 用60μl 2×上样缓冲液将琼脂糖珠-抗原抗体复合物悬起,轻轻混匀,缓冲液的量依据上样多少的需要而定(60 μl足够上三道)。
15. 将上样样品煮5min,以游离抗原,抗体,珠子。离心,将上清电泳,收集剩余琼脂糖珠,上清也可以暂时冻-20℃,留待以后电泳,电泳前应再次煮5min变性。


附:

RIPA Buffer配制:
基础成分:
Tris-HCl(缓冲液成分,防止蛋白变性)
NaCl(盐份,防止非特异蛋白聚集)
NP-40(非离子去污剂,提取蛋白;用H2O配制成10%储存液)
去氧胆酸钠(离子去污剂,提取蛋白;用H2O配制成10%储存液;避光保存)
注意:准备激酶(致活酶)实验时,不要加去氧胆酸钠,因为离子型去污剂能够使酶变性,导致活性丧失。
RIPA蛋白酶抑制剂
苯甲基磺酰氟(PMSF)(用异丙醇配制成200mM的储存液,室温保存)
EDTA(钙螯合剂;用H2O配制成100mM的储存液,PH 7.4)
亮抑酶肽(Leupeptin)(用H2O配制成1mg/ml的储存液,分装,-20℃保存)
抑蛋白酶肽(Aprotinin)(用H2O配制成1mg/ml的储存液,分装,-20℃保存)
胃蛋白酶抑制剂(Pepstatin)(用甲醇配制成1mg/ml的储存液,分装,-20℃保存)
RIPA磷酸(酯)酶抑制剂
激活的Na3VO4(用H2O配制成200mM的储存液,见Sodium Orthovanadate Activation Protoco)
NaF(200mM的储存液,室温保存)
注意:在准备做磷酸(酯)酶实验的时候,不加磷酸酯酶抑制剂

工作液配制:
配制100ml的modified RIPA buffe
1. 称取790mg 的Tris-Base,加到75ml 去离子水中,加入900mg的NaCl,搅拌,直到全部溶解,用HCl调节PH值到7.4
2. 加10 ml 10%的NP-40
3. 加2.5 ml 10%的去氧胆酸钠,搅拌,直到溶液澄清
4. 加1 ml 100mM的EDTA,用量筒定容到100ml,2-8℃保存
5. 理论上,蛋白酶和磷酸酯酶抑制剂应该在使用当天同时加入(抑蛋白酶肽,亮抑酶肽,胃蛋白酶抑制剂各100 μl; PMSF, Na3VO4, NaF各500 μl),但是PMSF在水溶液中很不稳定,30分钟就会降解一半,所以PMSF应该在使用前现加,其他抑制剂成分可以在水溶液中稳定5天。
各种成分在工作液中的终浓度:

 
   * Tris-HCl: 50 mM, pH 7.4
 
   * NP-40: 1%
 
   * 去氧胆酸钠:0.25%
 
   * NaCl: 150 mM
 
   * EDTA: 1 mM
 
   * PMSF: 1 mM
 
   * 抑蛋白酶肽,亮抑酶肽,胃蛋白酶抑制剂: 各1 μg/ml
 
   * Na3VO4: 1 mM
 
   * NaF: 1 mM

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