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Plus推荐 | Cell Research连续发表的三篇m6A相关综述,很多关键问题仍有待解决

 六月花LI 2018-09-11

撰文丨黄   蔚


在过去的六七年间,围绕RNA的m6A修饰研究是生命科学领域最热门的方向之一,文章频出,特别是在CNS系列期刊,有很多非常漂亮的工作,让人目不暇接。基于此,小编向大家推荐三篇Cell Research的综述论文,分别来自中科院基因组所杨运桂组和美国希望之城(City of Hope)陈建军组以及芝加哥大学Tao Pan,为大家梳理m6A修饰复合体相关蛋白的鉴定,功能以及m6A在疾病,特别是肿瘤中的作用的研究进展。


杨运桂老师发表题为“Dynamic transcriptomic m6A decoration: writers, erasers, readers and functions in RNA metabolism”的综述,主要介绍了目前对m6A的书写器(writers)、擦除器(erasers)和阅读器(readers)的鉴定和功能,帮助大家全面的了解参与RNA m6A修饰的蛋白分子及其影响的RNA代谢过程,并主要论述了m6A在mRNA可变剪接上的研究进展。




RNA的m6A修饰是由多蛋白组成的复合体完成的,该复合体中最早被鉴定到的是METTL3,METTL14和WTAP。其中,METTL3定位在细胞核中,是催化m6A修饰的酶,也有文章报道细胞质中的METTL3能发挥独立于酶活性的功能,促进mRNA的翻译【1】。而METTL14虽然与METTL3同源,却缺少酶的催化活性结构域,被认为是通过提供RNA结合平台来提高METTL3的催化活性【2-5】。WTAP也不具备催化酶的活性,其功能主要是帮助METTL3/METTL14复合体定位到核小斑(nuclear speckles)【6-7】。除了我们熟悉的METTL3/METTL14/WTAP复合体外,近年来通过蛋白质组的分析,研究发现m6A的书写器还包括KIAA1429、RBM15/RBM15B、ZC3H13和METTL16。其中,除METTL16外,其他蛋白都与METTL3/METTL14/WTAP复合体的结合。KIAA1429与m6A修饰位点的选择性有关【8】,RBM15/RBM15B介导了mRNA和lncRNA(XIST)的m6A修饰【9】,ZC3H13则与WTAP的细胞核定位相关【10】。METTL16与METTL3同源,且具有催化活性,主要功能是调节体内SAM的水平,以及参与核仁小RNA U6的m6A修饰【11】


目前发现的RNA m6A去甲基化酶只有两个:FTOALKBH5。有趣的是,它们都定位在细胞核中,而我们知道,大部分mRNA在细胞核中转录加工成熟后,需要去到细胞质中进行翻译,那么,细胞质中的mRNA的m6A水平是否被调节,以及是否有定位在细胞质中的m6A去甲基化酶,都是需要解决的问题


RNA的m6A修饰的阅读蛋白主要是YTH家族蛋白以及其他的RNA结合蛋白。其中,YTHDC1定位在细胞核中,参与mRNA的可变剪接【12】。HNRNPA2B1的功能则有一些争议,其早先被报道通过识别m6A修饰参与miRNA的加工成熟过程中【13】,而后续的研究发现m6A可以改变RNA的结构,HNRNPA2B1识别了m6A影响的RNA结构,而非m6A本身【14】。YTHDF1、YTHDF2、YTHDF3、YTHDC2和IGF2BP1/2/3主要参与mRNA的翻译和降解。


下图是杨老师组论文中画的非常详细的示意图,对括参与m6A修饰的蛋白和功能,都做了详细的注释。



陈建军老师的综述题为“RNA N6-methyladenosine modification in cancers: current status and perspectives”偏重于梳理m6A相关蛋白在癌症中的研究进展,并讨论了靶向m6A相关蛋白的癌症治疗方案的可行性。



值得注意的是,该研究列举的部分研究得到了看似矛盾的结果。


比如FTO和METTL14,一个是去甲基化酶一个是甲基化酶,但都通过稳定MYC的mRNA从而促进白血病的发生发展【15-16】。研究者认为MYC mRNA不同位点的m6A修饰发挥了不同的功能,MYC 5’端的m6A修饰主要促进mRNA的降解,因此FTO通过消除MYC 5’端的m6A,从而促进MYC的表达。而MYC 3’端的m6A修饰则会增加mRNA的稳定性,METTL14通过增加3’端的m6A修饰促进MYC的表达。那么,m6A修饰的选择性就是下一个研究的问题了。


此外,在肝癌中,两个独立的研究组发现METTL14的功能完全相反【17-18】。Ma, J. Z.等发现METTL14抑制肝癌细胞的转移【17】,而Chen, M等发现促进肝癌细胞的增殖和转移【18】。对于这样有争议的结果,可能是由于所使用的细胞系及肿瘤组织的异质性造成的,因此,未来的研究需要进一步研究这其中的差异,以便更好的理解在不同细胞背景下影响基因功能的因素。



除了以上两篇综述,今年2月20日由芝加哥大学的潘涛教授发表在CELL RESEARCH上的综述“Modifications and functional genomics of human transfer RNA”也引起了小编的注意。


tRNA是细胞中摩尔丰度最高的一类RNA分子,也是被修饰得最多的RNA分子,平均每个分子有13个修饰。tRNA参与蛋白合成是最为大众熟悉的生物学过程。但关于tRNA如何相应环境变化,最大限度的提高翻译效率,仍有待探索。此外,有一部分tRNA会与不参加蛋白合成的蛋白质互作,说明它们有可能参与到了其他生命活动过程中。该综述系统的介绍了tRNA的基因结构以及tRNA上的修饰,为我们展示了tRNA丰富多彩的一面。


特别值得一提的是,该综述的字里行间流露出潘涛教授对tRNA的喜爱以及希望tRNA得到更多关注的希冀。比如开篇这一句:“tRNA is generally not on the mind of most research scientists, unless they meet it through chance encounter”


肿瘤研究一直是生物学中受关注度最高的方向之一,随着对转录组的深入分析,近几年tRNA也渐渐被发现在肿瘤的发生发展中发挥了重要的作用,颇有前景。



参考文献:

1. Lin S, Choe J, Du P, Triboulet R, Gregory RI. The m6A methyltransferase METTL3 promotes translation in human cancer cells. Mol Cell 2016; 62:335-345

2.Śledź P, Jinek M. Structural insights into the molecular mechanism of the m6A writer complex.Elife 2016; 5:e18434.

3. Wang P, Doxtader KA, Nam Y. Structural basis for cooperative function of Mettl3 and Mettl14 methyltransferases. Mol Cell 2016; 63:306-317.

4. Wang X, Feng J, Xue Y, et al. Structural basis of N6-adenosine methylation by the METTL3–METTL14 complex. Nature 2016; 534:575-578.

5. Rottman FM, Bokar JA, Narayan P, Shambaugh ME, Ludwiczak R. N6-adenosine methylation in mRNA: substrate specificity and enzyme complexity. Biochimie 1994; 76:1109-1114

6. Ping XL, Sun BF, Wang L, et al. Mammalian WTAP is a regulatory subunit of the RNA N6-methyladenosine methyltransferase. Cell Res 2014; 24:177-189.

7. Liu J, Yue Y, Han D, et al. A METTL3-METTL14 complex mediates mammalian nuclear RNA N6-adenosine methylation. Nat Chem Biol 2014; 10:93-95

8. Yue Y, Liu J, Cui X, et al. VIRMA mediates preferential m6A mRNA methylation in 3'UTR and near stop codon and associates with alternative polyadenylation. Cell Discov 2018; 4:10.

9. Patil DP, Chen CK, Pickering BF, et al. m6A RNA methylation promotes XIST-mediated transcriptional repression. Nature 2016; 537:369-373

10. Wen J, Lv R, Ma H, et al. Zc3h13 regulates nuclear RNA m6A methylation and mouse embryonic stem cell self-renewal. Mol Cell 2018; 69:1028-1038.

11. Pendleton KE, Chen B, Liu K, et al. The U6 snRNA m6A Methyltransferase METTL16 regulates SAM synthetase intron retention. Cell 2017; 169:824-835

12. Xiao W, Adhikari S, Dahal U, et al. Nuclear m6A reader YTHDC1 regulates mRNA splicing.Mol Cell 2016; 61:507-519

13. Alarcón CR, Goodarzi H, Lee H, Liu X, Tavazoie S, Tavazoie SF. HNRNPA2B1 is a mediator of m6A -dependent nuclear RNA processing events. Cell 2015; 162:1299-1308

14. Wu B, Su S, Patil DP, et al. Molecular basis for the specific and multivariant recognitions of RNA substrates by human hnRNP A2/B1. Nat Commun 2018; 9:420

15. Su, R. et al. R-2HG exhibits anti-tumor activity by targeting FTO/m(6)A/MYC/CEBPA signaling. Cell 172, 90–105 (2018). e123

16. Weng, H. et al. METTL14 inhibits hematopoietic stem/progenitor differentiation and promotes leukemogenesis via mRNA m(6)A modification. Cell Stem Cell 22,191–205 (2018). e199

17. Ma, J. Z. et al. METTL14 suppresses the metastatic potential of hepatocellular carcinoma by modulating N(6) -methyladenosine-dependent primary microRNA processing. Hepatology 65, 529–543 (2017)

18. Chen, M. et al. RNA N6-methyladenosine methyltransferase METTL3 promotes Q4 liver cancer progression through YTHDF2 dependent post-transcriptional silencing of SOCS2. Hepatology (2017)


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