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细胞培养流程及注意事项

 新用户80408249 2022-11-26 发布于海南

COOK

CELL

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一、细胞培养概念

细胞培养(cell culture)是指在体外模拟体内环境(无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等),使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。

细胞培养可分为原代培养和传代培养;直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为原代培养;当原代培养的细胞增殖达到一定密度后,则需要做再培养,即将培养的细胞分散后,从一个容器以1:2或其他比率转移到另一个或几个容器(同样底面积的容器)中扩大培养,为传代培养,传代培养的累积次数就是细胞的代数。

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二、细胞复苏

1、

细胞复苏遵循“慢冻快融”的原则,所以细胞冻存管从液氮中取出后,稍等待液氮挥发后,将冻存管放入37℃水浴中轻轻摇动融化(约1min)

2、

吸取细胞混悬液加入离心管,800rpm离心3min,弃去上清

3、

加入对应细胞的完全培养基,重悬细胞,再以5x105个/ml细胞接种至培养瓶/培养皿中

4、

放入37℃培养箱中,CO2 5%培养,定时观察细胞培养情况

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三、细胞冻存

1、

悬浮细胞:吸取细胞悬液,800rpm离心3min,弃掉上清

2、

贴壁细胞:用移液管或者巴氏吸管吸取培养液,加入PBS轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次,冲洗细胞,然后吸取丢弃PBS,加入胰酶消化,轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次,使胰酶与细胞表面充分接触,放到37℃孵育2-3min(对于新培养的细胞,建议消化时每隔30s镜下观察消化情况,以确定合适的消化时间),加入含血清完全培养基终止消化,用移液器吸取瓶内液体轻轻冲洗容器表面,使细胞流入容器底部,重复2-3次,将细胞悬液移到离心管中,800rpm离心3min,弃去上清

3、

加入冻存液:加入细胞冻存液(最好是用10% DMSO 完全培养基冻存细胞)重悬细胞,使细胞浓度在(5~10)×105个/ml,然后分装到冻存管中

4、

程序降温盒:4℃放30min → -80℃ 过夜(至少4-8h)→ 液氮(长期保存)

5、

温馨提醒:

4℃ 30min这个步骤一定不能省略,否则冻存液无法渗透到细胞,易产生冰晶导致细胞受损;细胞-80℃保存不要超过一个月,长期保存要放在液氮中,保持细胞活性

赛库生物的细胞每一个批次都会进行一次支原体和STR检测

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四、细胞传代

1、

悬浮细胞:吸取细胞悬液,800rpm离心3min,弃掉上清,加入新鲜的含血清的完全培养基,用吸头小心重悬细胞,按细胞生长密度将细胞悬液均匀分配到培养容器中进行传代培养

2、

贴壁细胞:用移液管或者巴氏吸管吸取培养液,加入PBS轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次,冲洗细胞,然后吸取丢弃PBS,加入胰酶消化,轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次,使胰酶与细胞表面充分接触,放到37℃孵育2-3min,加入含血清完全培养基终止消化,用移液器吸取瓶内液体轻轻冲洗容器表面,使细胞流入容器底部,重复2-3次,将细胞悬液移到离心管中,800rpm离心3min,弃去上清,加入新的含血清完全培养液重悬成单细胞悬液,按细胞生长密度将细胞悬液均匀分配到培养容器中进行传代培养

3、

将培养容器放到37℃孵育,第二天显微镜下观察细胞生长情况

4、

温馨提示:细胞传代需等面积按比例传代,如T25培养瓶培养,需1:2传代,应是将细胞悬液分为两份各加入T25培养瓶中进行培养

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五、注意事项

1、

细胞的冻存和复苏一定要遵循“慢冻快融”的原则,最大限度的保证细胞活性

2、

培养皿/培养瓶/培养板选择:贴壁细胞培养选用TC处理的

3、

使用L-15培养基时,培养瓶要用非透气盖的培养瓶,因为L-15培养基的成分会与CO2反应

4、

细胞培养换液:一般2-3天换液,有的细胞生长速度慢,可适当延长,但是也不要超过7天换液,如果换液后培养基快速变黄,则大概率是细胞被污染

5、

培养细胞最适PH为7.2-7.4,过酸、过碱会导致细胞形态发生异常,甚至死亡

6、

细胞密度达到70%-80%汇合度,此时处于对数生长期,最适合传代

7、

当细胞出现污染时,细菌污染可视污染程度决定是否加抗生素挽救,真菌污染和支原体污染建议不要(除非细胞很珍贵,难获得),当出现污染需要加抗生素处理时,在开瓶前需要把所有东西都准备好,并将操作台上无关的用品移走,避免造成二次污染

8、

移液废液缸建议外置,内置废液缸易引入污染

9、

在超净台/生物安全柜操作时左右手不能交叉,放置实验用品时需75%乙醇消毒再放入,严格按照操作规范进行

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