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丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作
2022-12-02 | 阅:  转:  |  分享 
  
DOI: 10.12357/cjea.20220093

储薇, 郭信来, 张晨, 周柳婷, 吴则焰, 林文雄. 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望[J]. 中国生态农业学

报 (中英文), 2022, 30(11): 1709?1721

CHU W, GUO X L, ZHANG C, ZHOU L T, WU Z Y, LIN W X. Research progress and future directions of arbuscular mycorrhizal

fungi-plant-rhizosphere microbial interaction[J]. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2022, 30(11): 1709?1721

丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望

储 薇, 郭信来, 张 晨, 周柳婷, 吴则焰, 林文雄

(福建农林大学生命科学学院 福州 350002)

摘 要: 根际微生态作为土壤生态环境的热区, 以多种方式影响着植物的生长和代谢, 许多科学家将根系视为第二

次绿色革命的关键。丛枝菌根(arbuscular mycorrhizal, AM)是植物最普遍的菌根共生类别之一, 与陆地植物的进化

史密不可分。丛枝菌根真(arbuscular mycorrhizal fungi, AMF)与宿主植物根系形成的菌根共生体可改变植株根

系形态、改善营养状况, 从而促进宿主植物的生长发育, 提高抗逆性及抗病性, 参与植物的许多生理代谢过程, 并通

过对土壤结构及微生物群落结构的调节间接影响植物的生长。本文简述了AMF与植物、根际微生物和菌根辅助

菌(mycorrhizae helper bacteria, MHB)的互作研究结果, 探讨了菌根共生对植株建立、竞争、维持生物多样性及其

在地球环境生态中的重要作用。尽管AMF与植株共生已经表现出良好的生产效益, 但是大多数科学文献报道的研

究都是在受控条件(生长室或温室、无菌基质)下进行的, 由于AMF在自然环境中的响应可能会发生显著变化, 因

此我们还需要在田间条件下评估AMF的能力。其次, 进一步探索植物与真菌分子对话中的共生基因网络和关键转

录因子、破译MHB的关键代谢信号通路也十分重要。

关键词: 丛枝菌根真菌; 菌根网络; 生态功能; 促生作用; 抗性

中图分类号: S181开放科学码(资源服务)标识码(OSID):



Research progress and future directions of arbuscular mycorrhizal fungi-plant-

rhizosphere microbial interaction

CHU Wei, GUO Xinlai, ZHANG Chen, ZHOU Liuting, WU Zeyan, LIN Wenxiong

(College of Life Sciences, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350002, China)

Abstract: Microecology of rhizosphere, a key area of soil ecology, affects plant growth and metabolism in many ways. Many scient-

ists regard the root system as key to the second green revolution. Arbuscular mycorrhizal (AM) is one of the most common mycor-

rhizal symbiotic categories of plants and is closely related to the evolutionary history of terrestrial plants. Mycorrhizal symbionts

formed by arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and host plant roots can change plant root morphology and improve nutritional status

to promote the growth and development of host plants, improve stress resistance and disease resistance, participate in many physiolo-

gical metabolic processes of plants, and indirectly affect plant growth through the regulation of soil structure and microbial com-

munity structure. This paper briefly describes the interaction between AMF and plants, rhizosphere microorganisms, and mycorrhizal

helper bacteria (MHB); and discusses the important role of mycorrhizal symbiosis in plant establishment, competition, maintenance of

biodiversity, and its role in the Earth’s ecology. Although the symbiosis between AMF and plants has shown good production bene-





国家自然科学基金项目(31500443)、福建省自然科学基金项目(2022J01139)、2022年福建农林大学科技创新专项(KFb22046XA)和福建农

林大学生态学一流学科建设项目资助

通信作者: 吴则焰, 主要研究方向为森林生态学和分子生态学。E-mail: wuzeyan0977@126.com

储薇, 主要研究方向为森林生态学和分子生态学。E-mail: 849935889@qq.com

收稿日期: 2022-02-11 接受日期: 2022-05-23

This study was supported by the National Natural Science Foundation of China (31500443), the Natural Science Foundation of Fujian Province

(2022J01139), 2022 Fujian Agriculture and Forestry University Science and Technology Innovation Project (KFb22046XA), Fujian Agriculture and

Forestry University Ecological First-Class Discipline Construction Project.

Corresponding author, E-mail: wuzeyan0977@126.com

Received Feb. 11, 2022; accepted May 23, 2022



中国生态农业学报 (中英文) ?2022年11月 ?第?30?卷 ?第?11?期

Chinese?Journal?of?Eco-Agriculture,?Nov.?2022,?30(11):?1709?1721

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fits, most of the studies reported in the scientific literatures have been carried out under controlled conditions (growth chamber or

greenhouse, sterile substrate). Because the response of AMF in the natural environment may differ significantly, it is also needed to

evaluate the ability of AMF under field conditions. It is also very important to further explore the symbiotic gene network and key

transcription factors in the molecular dialogue between plants and fungi, and decipher the key metabolic signaling pathway of MHB.

Keywords: Arbuscular mycorrhiza fungi (AMF); Mycorrhizas network; Ecological function; Growth promoting effect; Resistance



菌根是土壤中部分真菌的菌丝与高等植物根系

形成的一种共生体。共生真菌从植物体内获取生长

发育所必要的碳源与能源物质, 同时共生真菌扩大

根系的吸收范围, 增强植物对水和养分的吸收。菌

根真菌在陆地生态系统中广泛存在, 大部分现存的

维管植物和非维管植物均可与之形成菌根, 占全球

植物种类近80%, 其中又以被子植物居多[1]。依据参

与共生的真菌与植物的种类以及所形成共生体系的

特点, 这些菌根主要被分为4大类: 外生菌根(ecto-

mycorrhizas, ECM)、丛枝菌根(arbuscular mycorrhizas,

AM)、兰科菌根(orchid mycorrhizas, ORM)和杜鹃花

类菌根(ericoid mycorrhizas, ERM)。

其中AM分布最为广泛(72%), 自早期陆地植物

定殖起就发挥着重要作用, 与植物进化史密不可分[2]。

AM的 主 要 特 点 是 在 植 物 根 内 产 生“泡 囊” (vesi-

cules)和“丛枝” (arbuscles)两大典型结构, 因此称泡

囊-丛枝菌根(vesicular-arbuscular mycorrhiza, VAM)。

但部分类型的真菌不能在根内产生泡囊, 却均可形

成丛枝, 故此类菌根又称丛枝菌根, 此类真菌便称为

丛 枝 菌 根 真 菌 (arbuscular mycorrhizal fungi, AMF)。

AMF属于球形菌门(Glomeromycota), 被分为球囊菌

纲 (Glomeromycetes)、 原 囊 霉 纲 (Archaeosporomy-

cetes)、类球囊霉纲(Paraglomeromycetes) 3类, 截至

目前, 共发现11科25属250种[3]。AMF与植物之间

的相互作用提高了植物对土壤资源的利用率, 能更

好地应对各种环境胁迫, 特别是气候变化[4]、干旱胁

迫[5]、盐碱和重金属污染[6], 也增强了植物对生物干

扰的耐受性[7]。随着我国生态农业的发展, 菌根的研

究及应用受到了广泛关注。本文综述了AMF与植

物、其他土壤微生物和菌根网络的互作研究成果,

探讨了菌根共生对植株建立、竞争、维持生物多样

性及其在地球环境生态中的重要作用, 并对AM的

研究提出了展望, 旨在为进一步理解AMF在植物互

作中的生态学功能提供参考。

1 丛枝菌根真菌与植物互作



1.1 共生机制

AMF孢子在土壤中萌发, 产生的菌丝通过扁平

的分枝结构接触宿主植物侧根表皮细胞, 这种结构

被称为“菌基”。菌基和表皮细胞壁在软化和交织过

程中附着[8], 穿透菌丝, 继续发育后穿过外层根细胞

层, 形成松散的细胞内卷曲或分枝菌丝两种不同的

定殖模式, 最后到达内皮层细胞, 形成树状的丛枝菌

丝[9]。AMF的菌丝从来不直接接触宿主植物细胞的

细胞质, 而是被限制在质外空间的不同共生界面内。

这 个 界 面 被 丛 枝 周 膜 (peri-arbuscular membrane,

PAM)包裹, 并将丛枝从细胞质中分离出来, 形成营

养物质交换的主要场所, 因此被认为是所有菌根共

生体的功能核心[10]。

在AMF的定殖过程中, AMF激活了植物细胞分

裂的相关机制[11]。植物根系则通过合成释放类胡萝

卜素衍生物、类黄酮等, 诱导AMF的能量代谢, 刺

激孢子的萌发和菌丝分枝[12-13]。宿主植物将合成的

脂肪酸转移到真菌中以维持AMF定殖, 该转移依赖

于 RAM2 (Required for Arbuscular Mycorrhization 2)

和ATP结合盒转运蛋白介导的植物脂质运输途径[14]。

此外脂肪酸也可诱导AMF在非共生阶段产生次生孢

子[15]。从根分泌物中提取的一种纯化倍半萜内酯 ?

独脚金内酯(strigolactone, sl)和合成类似物GR24已

被证明能诱导AMF菌丝分支并激活其线粒体能量

代谢[16]。一些非宿主植株根系的分泌物会抑制AMF

产孢和对宿主植物的侵染。土壤P的有效性和宿主

植物C含量以及与菌根的根、孢子、孢子果和根外

菌丝共生的细菌也均被证明为激活或抑制AMF共

生的信号[17-19]。蛋白磷酸酶2A (Protein Phosphatase

2A, PP2A)调控亚基已被证明参与植物与AMF之间

的信号传递过程[20]。针对AMF共生中N、C、P等

元素吸收、同化和转运的具体过程, 研究者们已构

建了多种模型[18]。

1.2 AMF与宿主植物的互作

一般认为, AMF主要以糖的形式从植物中吸收

营养物质。而AMF通过多种途径提高共生植物对

水分、营养元素的吸收和重金属元素的固持, 促进

植株生长[21], 特别是对胁迫环境中P、K等的吸收以

及植物干重增加具有重要意义[22-23]。菌根植物还比

非菌根植物含有更多的C[24]、N[21]、Fe和Zn[25], 并且

随土壤有机质的增加, 养分吸收能力也会增强, 但随

1710 中国生态农业学 报 (中英文 )?2022 第 30 卷

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着P的增加会降低AMF侵染率和加剧AMF孢子

化[26]。近些年发现兰花科 (Orchidaceae) 和杜鹃花科

(Ericaceae)中的一些绿色光合作用植物可以从与其

根共生的AMF中吸收C, 这种双重营养能力被称为

混合营养[27]。最新研究发现植物可以依据自身P营

养状态, 通过P响应网络对直接P吸收途径和菌根

共生P吸收途径进行统一调控[28]。这些真菌通过土

壤中的根外菌丝网络吸收P, 并将其传递给宿主植物。

除了这一机制外, 也有人提出AMF通过调节土壤酶

活性来提高土壤P的有效性[29], 如植酸酶[30]、酸性磷

酸酶[31-32]、碱性磷酸酶[33]和脲酶[34]等, 但作用强度

主要取决于菌丝在土壤中的生长状况。一方面, 根

系会分泌酸性磷酸酶, 在低P条件下, 宿主植物中参

与酸性磷酸酶分泌的基因被AMF共生菌上调, 从而

增加了菌根中酸性磷酸酶的释放[35]。另一方面, AMF

还能直接从菌丝中释放酸性磷酸酶到土壤中[36-37]。

虽然AMF会促进P的总吸收, 但AMF菌丝的P运

输通常比通过从土壤扩散到根部的直接获取方式更

快[23], 会干扰根的直接吸收[38]。

除养分吸收外, AMF的形成对于促进植物提高

植物抗病性、抗逆能力以及提高作物品质具有重要

意义。AMF诱导宿主植物细胞壁加厚、病程相关蛋

白的积累和次生代谢的增强等防御反应[39-40]。许多

研究表明, 接种AMF可以通过调节脱落酸(ABA)的

浓度[41]、产生抗氧化酶(SOD、POD、CAT)和可溶

性糖[42]、降低无机和有机溶质的净积累来提高植株

的抗旱性, 后者也可能作为渗透保护剂。AMF通常

还会诱导植物根系结构发生改变, 特别是根系长度、

密度、直径和侧根数量[43-44], 在缺水环境下, 菌根植

物较好的根系结构使根外菌丝能够扩展到植物根际

耗竭区之外, 从而更有效地吸收水分和低流动养分

(P、Zn、Cu等)[45](图1)。据报道, 接种AMF可提高

西瓜[Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. et Nakai]水分

利用率[46]。这表明AMF不仅能提高水分吸收, 还能

使寄主植物更有效地利用水分。这也可以归因于增

强了蒸腾和气孔导度[47], 以及增加养分的可用性[48]。

AMF对重金属离子有一定的固持作用, 从而减轻其

对宿主植物的毒害[49]。以Cd为例, 研究者发现AMF

能够提高暴露于高Cd环境下的菌根植株对Mg、P

的吸收[50], 从而提高叶绿素浓度, 提高光合产物的产

量, 继而增加生物量[51], 在很大程度上减轻Cd对地

上部和根系生物量的有害影响。AMF接种后植株

中 Cd浓 度 降 低 的 另 一 个 原 因 可 能 是 由 于 皮 层

细胞内真菌结构中Cd的积累和生物量增加所产生

的稀释效应。Xiao等[52]证明, AMF通过增强酸性磷

酸酶以及抗氧化 (CAT、SOD、NM04A等)的活性,

提高其清除活性氧(ROS)的能力, 并通过稀释作用

缓解Cd毒性, 从而减轻了秸秆还田对高Cd污染土

壤中白羊草[Bothriochloa ischaemum (L.) Keng]生长

的负面影响。在Cd胁迫条件下, AMF网络作为一个

屏障, 阻止Cd向地上部转移[6]。有些重金属离子水

平的提高甚至可以增加AMF侵染率[53]。



养分耗竭带

Nutrient depletion

根系

Root

土层

Soil

非菌根共生菌根共生

Mycorrhizal symbiosis

有效吸收面积

Effective absorption

area of nutrients

菌根网络

Mycorrhizal networks

zone

Non-mycorrhizal symbiosis

图 1 丛枝菌根定殖的积极作用

Fig. 1 Positive effect of colonization of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF)

AMF的菌丝(紫色)延伸到枯竭带(白色)之外, 能够增加养分的有效吸收面积, 促进AM根吸收多种营养物质(其中浅蓝色箭头表示养分流动

方向)。但菌丝周围最终也会形成养分耗竭带。The hyphae of AMF (purple) extend beyond the depletion zone (white), which can increase the effective ab-

sorption area of nutrients and promote the absorption of multiple nutrients by AM roots. Light blue arrows indicate the direction of nutrient flow. But nutrient

depletion zones also eventually form around the AM hyphae.

第 11 期 储 薇等 : 丛枝菌根真菌 -植物 -根际微生物互作研究进展与展望 1711

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近些年人们发现菌根生菜(Lactuca sativa L. var.

ramosa Hort.)叶片中花青素、类胡萝卜素和酚类物

质的含量高于对照[54], 而在草莓(Fragaria×ananassa

Duch.)果实中, AMF定殖增加了矢车菊素-3-O-葡萄

糖苷(cyanidin-3-O-glucoside chloride)的含量[55]。AMF

共生促进果实花青素含量的增加和脱落酸ABA代

谢的调节, 不仅是在不断变化的环境中提高浆果品

质的有效手段[4,56], 对提高多种作物的质量和产量也

有一定作用[57]。盐度条件下施用AMF对观赏植物

也有积极作用。例如, Gómez-Bellot等[58]证明在盐胁

迫下, Tenuihypharum sp. nova能够增强植株对P、K、

Ca和Mg的吸收, 同时减少有毒离子(Na+和Cl?)向茎

部的转运, 对康乃馨(Dianthus caryophyllus L. Kazan)

和柃木(Eurya japonica Thunb.)的生长和观赏品质有

改善作用。接种AMF还可促进观赏植物的生长和

开花, 特别是在低肥条件下。

与AMF共生的植物可以在营养不良的条件下

获得生长优势[59]。但不同属的AMF在功能上存在

一定差异[60], 一些AMF物种甚至可能会导致生长抑

制[61]。提高根际养分吸收的有效性, 促进养分从土壤

向植物转移的基础是AMF结构和功能的多样性, 包

括其侵染繁殖体、囊泡状脂质储存结构、类似树状

结构的丛枝和与根相连的丝状菌丝等。赋予宿主的

不同效益通常与AMF物种从其宿主身上提取的C

量[62]、获得P的能力、营养储存策略[63]等有关。在

共生过程中, AMF之间的竞争往往导致某些物种主

导寄主定殖, 其结果取决于环境条件。不同植物种

类对AMF具有一定的特异招募性, 植株年龄与生长

阶段、根系状况等[64]都会影响AMF孢子分布。AMF

与植物之间的相互选择和合理匹配, 是影响植物养

分获取和菌丝发育的关键[65]。

1.3 AMF与非宿主植物的互作

宿主植物可通过影响与其共生的菌根真菌而影

响其他植物, 非宿主植物也可通过产生化感物质和

挥发性有机化合物, 抑制与其他植物共生的菌根真

菌[66]。一些与宿主植物共生的AMF可以进入非宿

主植物的根系, 而不形成典型的菌根结构, 而这种非

典型菌根定殖通常会抑制非宿主植物的生长, 但会

增强诱导系统的抗性[67]。AMF有时会扭曲非共生植

物的根组织, 阻碍其根的发育和功能[68]。在轮作中,

非寄主植物如十字花科(Brassicaceae)、藜科(Cheno-

podiaceae)等或定殖能力弱的作物如菠菜(Spinacia

oleracea L.)或辣椒(Capsicum annuum L.)等种植会

对AMF群落产生显著的负面影响, 其对高度菌根化

植物的影响度可能比施用P或耕作更大[69]。

AMF在保护宿主植物免受化感物质的有害影

响的同时, 会将影响延伸到根际以外[70]。有研究发

现AMF可将除草剂和化感物质运输到与之竞争的

植物体内, 阻碍宿主植物附近15~20 cm其他植物的

生长[71]。

2 AMF与其他根际生物的互作

菌根真菌还介导植物与其他根际生物的互作。

菌根圈内的主要成员(根系、细菌、真菌、线虫等)

之间往往通过协同和/或拮抗作用影响土壤群落的组

成、相互作用和物种多样性, 达到动态平衡。

2.1 AMF与菌根辅助菌(mycorrhizae helper bac-

teria , MHB)的互作

长期以来, 菌根共生关系被认为是两类物种之

间的相互作用, 然而, 研究发现AMF孢子壁内、孢

子壁上或细胞质中承载着多种细菌。这些细菌类群

通 常 嵌 在 孢 子 壁 的 外 层 或 由 包 围 在 各 种 球 囊 霉

(Glomerales)孢子周围的菌丝形成的微孔中(图2)。

属于不同属的细菌构成一个密集的、活跃的细菌群

落, 表现出不同的功能能力, 特别是促进AMF孢子

萌发和非共生菌丝生长。几丁质分解细菌占从摩西

管柄囊霉(F. mosseae)孢子壁分离的所有几丁质分

解微生物的72%[71], 表明它们有能力消化AMF孢子

的外壁, 在AMF孢子萌发过程中发挥着重要的功能

作用, 因此被称为MHB。一些AMF的孢子在MHB

的存在下, 孢子萌发率和萌发程度更高。从菌根际

分离的类芽孢杆菌(Paenibacillus spp.)和芽孢杆菌

(Bacillus spp.)也同样促进了AMF的生长[72]。并且在

体外培养条件下, 强壮类芽孢杆菌(Paenibacillus val-

idus)也能诱导根内球囊霉-Sy167产生可育孢子[73]。

因此MHB被认为是AMF-植物共生中的第3部分,

然而, 关于细菌活动对孢子萌发和菌丝生长的作用

机制的信息很少。

MHB还通过触发各种植物生长因子, 显示出促

进植物生长的特性。MHB已被报道参与生产抗生

素对抗真菌植物病原体[74]、合成生物活性化合物[75]

以及供应营养[76]等, 包括吲哚乙酸(IAA)的产生、

固N、磷酸盐和植酸盐的溶解[77]等功能活动。这些

功能对于AMF及MHB作为生物肥料的可能用途是

非常重要的, 使AMF更有效地促进植物对土壤中养

分的吸收, 因此也被称为AMF生物增强剂[78]。

值得注意的是, 由于AMF是一种专性植物共生

体, 具有土壤基菌丝和孢子, 严格与孢子共生的细菌群

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落组成可能会因特定的孢子壁组成和根系分泌物[79],

或培养基质和寄主植物特性[80]等环境变量而变化。

2.2 AMF与植物促生菌的互作

一些根际微生物通过产生植物激素或酶等促进

植物生长的物质[81]、增溶必需营养素[82]或抑制植物

病原体[83]来促进植物生长, 被称为植物促生菌(plant

growth promoting bacteria, PGPB)。菌根的形成有利

于PGPB的生长和繁殖[84], 提升根际PGPB数量及种

类来缓解胁迫[75]。同样, 许多促生菌对AMF菌丝生

长、根部定殖和产孢量也有着显著的积极影响[85-86]。

PGPB、AMF与其寄主植物之间存在着复杂的信号

通路关系[87]。有发现[88-89]指出AMF和PGPB的双重

接种降低了Al-P、Ca-P和Fe-P在土壤基质中的固

定, 增强了养分吸收, 提高了杨梅的抗旱性和精油含

量。AMF与根瘤菌具有显著的协同作用, 可显著提

高植株的结瘤、固氮、营养、种子产量和生物量[29],

植物的抗逆性和抗病性也远优于单接种[90]。因此, 植

物-PGPB-AMF联合共生研究在实践应用方面具有

广阔前景。然而双接种的正效应也受到不同组合

AMF、PGPB和植物的匹配关系与环境条件的影响,

具有一定局限性。

2.3 AMF与致病菌的互作

植物病害中, 真菌导致农作物减产的影响最大,

其次是植物病原性细菌和病毒。其中多种致病真菌

可通过个体发育在AMF共生树种中积累[91], 而AMF

可以增强宿主植物对许多土传真菌病原体的防御能

力[92]。例如减轻链格孢属(Alternaria)[93]、丝核菌属

(Rhizoctonia)[94]等多种病原菌的侵袭, 还可调节易感

枯萎病香蕉(Musa nana Lour.)幼苗中防御相关基因

的表达[95]。AMF诱导植物对病原物防御能力的增加

或感病性下降的前提条件是在病原菌污染前就形成

菌根并发育良好, 而且其潜在的拮抗作用的有效性

还有赖于土壤中病原物的侵染势和致病性[96]。这可

能与植物免疫系统的研究所揭示的病原菌感染和

AM定植之间的相似性有关, 导致了AMF共生和抗

病之间的权衡。

此外, AMF定殖可以增强宿主对叶面病原菌的

抵抗力, 例如稻瘟病菌(Magnaporthe)[97]。植物对病

毒感染的抗性可由多种生物和非生物制剂诱导。在

许多针对植物病害的病毒的研究中, AMF作为生物

诱导剂的应用已经观察到大量与诱导系统抗性(in-

duced systemic resistance, ISR1)有关的化学和生理变

化, 这些化学和生理变化包括细胞死亡和氧化破裂,

胼胝质的沉积和木质素, 植物抗毒素的合成和新蛋

白质等[98]。

目前能够解释AMF抑制土传病原物提高植物

抗病性的作用机制主要包括: 改善植物营养、改变

根系形态结构[68]、与病原物竞争光合产物、病原菌



根外菌丝

Extraradical hyphae

皮层

Cortex

内表层

Endodermis

泡囊

Vesicules

NH

+ 4

丛枝

表皮

Epidermis

生物膜

Biofilm

细菌

MHB

厚垣孢子

Chlamydospore

N 2

P IP

Arbuscules



图 2 植物根部-丛枝菌根菌-菌根辅助菌之间的相互关系

Fig. 2 Interrelationship between plant roots-arbuscular mycorrhizal fungi-mycorrhizae helper bacteria

NH+4

NH+4

菌根辅助菌(MHB)可以位于孢子和菌丝内部和/或周围, 在菌丝消化后释放到根和细胞中。IP: 不溶性磷; P: 可溶性磷; N2: 大气氮; : 铵。

Mycorrhizae helper bacteria (MHB) can be located inside and/or around spores and hyphae and released into roots and cells after hyphae digestion. IP: insoluble

phosphorus; P: soluble phosphorus; N2: atmospheric nitrogen; : ammonium.

第 11 期 储 薇等 : 丛枝菌根真菌 -植物 -根际微生物互作研究进展与展望 1713

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定殖所必需的植物脂肪酸和侵染位点[14]、调节菌根

围内微生物区系[99]、组成激活植物防御机制[100]等方

面。土壤负反馈和差异化菌根效应有利于AMF植

物的共存, 导致植物、土壤微生物和动物的高度多

样性。目前AMF已被广泛应用于各种植物病原菌

的生物防治方面。

2.4 AMF与土壤动物的互作

植物与菌根和固氮细菌的共生关系会促进植物

生长, 提高作物产量, 帮助植物抵抗一些有害昆虫[101]。

例如, AMF还可降低大豆胞囊线虫(Heterodera gly-

cines Ichinohe, SCN)[102]、南方根结线虫(Meloidogyne

incognita Kofoid)[103]等病原线虫对植物所造成的危害

程度, 甚至抑制线虫繁殖。但在另一项研究中, 接种

AMF 12周后, 绿豆[Vigna radiata (L.) Wilczek]根中

根结线虫的种群密度增加, 且与植株营养状况呈正

相关[104]。蚯蚓、蚂蚁、马陆、白蚁等土壤动物对

AMF的传播存在一定影响, 它们所携带的真菌繁殖

体活力也不尽相同[105]。但有一些小型节肢动物, 如

螨和一些弹尾目昆虫常以AMF的孢子和菌丝为食,

因此对AMF的生存不利。

3 菌根网络(mycorrhizal networks, MNs)

菌丝的再侵染是指根外菌丝体接触到其他植物

根系时, 由于菌根共生中植物和真菌之间普遍缺乏

特异性, AMF自由基菌丝可通过菌丝之间自我识别

高度调控菌丝间的融合程度以及融合后的作用强度,

再次侵染定殖, 在相同或不同种的植物之间形成联

系。这种真菌菌丝在较近的距离或较短的时间内聚

集并将两种或两种以上植物的根连接在一起所形成

的结构, 就是菌根网络。除单株AMF菌丝体的再侵

染外, 形成MNs的另一条重要途径是菌丝间的融合。

但 并 非 所 有 的 菌 丝 之 间 相 互 接 触 都 会 发 生 融 合,

AMF具有很强的自我识别机制, 非自交不亲和[106],

但不同基因型的AMF在吻合度上可能存在显著差

异 [99]。Croll等 [107]研 究 来 自 根 内 根 生 囊 霉(Rhizo-

phagus irregularis)的多株菌株发现, 遗传上不同的

AMF之间存在细胞质连接, 通过这些连接, AMF之

间发生了遗传交换, 且混交明显。

MNs存在于所有主要的陆地生态系统中。通常

彼此融合的两者的菌丝通过产生桥状结构融合在一

起。短于50 μm被称为“短桥”, 而长于50 μm被称为

“长桥”。原生质通过菌丝桥在两个菌丝之间流动, 证

实了菌丝体的连续性。研究还发现一种独特的融合

行为, 不涉及菌丝尖端或突起的菌丝。细胞壁和膜

融合发生在一些菌丝生长非常接近的地方, 以至于

没有形成桥梁, 在直接接触的菌丝壁已经溶解的区

域也观察到原生质流, 从而证实菌丝间已经发生了融

合。MNs存在的最强有力的证据来源于维管植物[108]

和非维管苔类, 因其具有很强的共生特异性[109], 且已

被发现其利用菌根网络从邻近的自养植物中获取C、

N[110]。菌根真菌网络的功能强度取决于宿主植物C

分配模式、菌根特性、不同种类植物与真菌的组合,

以及土壤中N、P浓度、温度等土壤环境因素[111]。

3.1 菌根网络对单株植物的影响

通 过 对 植 物 间 营 养 转 移 及 信 号 传 递 的 影 响,

MNs已被证明在广泛的生态系统中促进单株植物的

萌发、存活、生长或防御调节[112]。有研究[113]发现

AMF介导的资源的地下竞争是营养不良系统中幼苗

定植成功的重要因素。一些研究表明MNs连接起来

的植物中, 任何一方的根系开始分解时, AM在其间

的N和P的流动中起重要作用, 即根内AMF的定殖

能极大地提高受体植物从垂死的供体植物根部获得

N和P的能力[17], 增强幼苗的地下竞争能力, 从而促

进幼苗的建立。种内成熟个体-幼苗相互作用既有促

进性又有竞争性, 分离土壤、AMF和根系途径的研

究发现, MNs的积极作用部分被根系竞争所抵消[114]。

Tedersoo 等[1]认为菌根真菌通过稳定和平衡土壤养

分分配、反馈给土壤拮抗剂、不同菌根效益和养分

交易等机制来调节幼苗的建立和物种共存。

3.2 菌根网络对植物间联系的影响

菌根菌丝体为物质在土壤中的流动提供了广泛

的途径, 极大地促进了植物间的相互作用, 特别是养

分循环和信息传递[115], 且这种促进作用随着养分胁

迫势的增加而增加[116]。MNs在植物间的影响并不对

称[117], 完全或部分真菌异养植物可通过MNs从优势

植物个体获得部分或全部能量[118]。一般情况下, 通

过MNs的C转移对根系较小、活性较低、生长快

速的植物可能更有利[111], 而转移量与供体植株苗生

长速率无关[119]。但有研究表明, 连接到周围植物的

MNs对建立杂类草和禾本科(Poaceae)植物幼苗的

生物量有负面影响[120]。当联系起来的宿主植物中有

一方被寄生时, MNs优先向未寄生的宿主植物分配

更多矿质营养, 这对寄生者的生长产生负反馈[121](图3)。

AMF胞外菌丝体发生融合和交换细胞核的能力

表明, 除了营养流之外, 植物激素和其他信号流也可

能在网络中活跃[122]。MNs可作为植物与植物之间的

地下通信管道, 在健康和病原菌感染的相邻植物之

间传递抗病信号以及化感物质[71]。Alaux等[123]发现

1714 中国生态农业学 报 (中英文 )?2022 第 30 卷

http://www.ecoagri.ac.cn

菌丝直接参与了从患病马铃薯(Solanum tuberosum

L.)幼苗到未感染马铃薯幼苗的防御信号的传递, 激

活未感染植物中的防御反应。

3.3 菌根网络对生态系统结构和功能的影响

Engelmoer等[124]利用人工根系(玻璃根器官培

养), 研究了两种近缘AMF物种(Rhizophagus irregu-

laris、 Glomus aggregatum)在不同P胁迫下的根内和

根外竞争关系。结果发现在根内定殖过程中, 宿主

内部AMF物种间的竞争尤其激烈, 这两个物种对彼

此的丰度都产生了负面影响。这可能是因为在根际

定殖时, 根内生长空间更加有限[125]。P的有效性并

没有改变这些相互作用的结果。在植物群落水平上,

MNs被认为可通过影响植物间的相互作用、植物群

落多样性以及有可能通过放大或平衡植物竞争来调

节植物共存[126]。在干扰后, 保护幸存的成年植株对

次生林的建立很重要。从生态系统的角度来看, 在

物种丰富的生态系统中, MNs可通过促进干扰幼苗

的建立, 促进森林的自我更新, 并对生态系统的变化

起到负反馈作用。在极端情况下, MNs促进作用可

能仅限于单一植物物种, 通过MNs进行养分转移可

能仅增强该物种的竞争能力[95]。在这种情况下, 它将

破坏植物群落结构的稳定, 并对生态系统的变化起

到正反馈的作用, 从而维持生态系统的状态。

MNs及真菌多样性直接或间接地影响植物的扩

散和竞争, 从而形成植物种群和群落, 并调节局部尺

度上的植物共存和多样性。多种类型菌根共存时,

所有菌根类型的真菌都在争夺矿物质营养, 但它们

对有机营养吸收能力的不同, 使资源得到了一定程

度的垂直生态位分配。树木β多样性的纬度格局也

主要由AM树种决定[13]。土壤养分的细尺度干扰和

空间异质性可进一步促进与不同真菌类群共生的植

物共存[127]。植物菌根类型之间的生态位分化潜在增

加了菌根类型之间的竞争, 同时促进了属于不同菌

根类型的植物之间的共存。

植物-真菌菌根系统本身和相互连接的菌丝网络

协同决定了宿主植物的功能特性, 从而决定了宿主植

物的个体生态。近年来人们越来越认识到MNs在养

分和水循环中的重要性, 及其反馈全球变化的潜力[128]。

4 讨论与展望

本文综述了AMF在菌根生物学和生态学方面

的最新进展。AMF是全球养分循环的主要驱动力,

在陆地生态系统中起着关键作用。AMF为植物提供

矿物质营养以及逆境条件下给予保护, 进而对种子

的传播、幼苗的建立、种间和种内的竞争、土壤生

态位的分化以及植物多样性产生特定的影响。研究

发现: 1)开展菌根真菌和PGPB双接种研究对改善

作物生长具有重要意义。2)获得残留成熟树木的



真菌异养植物

Mycoheterotroph

(MH)

宿主植物

Host plants

异种

Heterospecific

混合营养植物

Mixed vegetative plants

昆虫

Insect同种近缘

Conspecific kin

同种非亲缘

Conspecific non-kin

非菌根植物

Non-mycorrhizal

plants (NM)

不同种的菌根网络

Mycorrhizal networks of different species



图 3 菌根网络对植物间物质循环及信号传递的影响

Fig. 3 Effects of mycorrhizal networks on material circulation and signaling between plants

图中彩色线条表示不同种的菌根网络(红、蓝、绿)。箭头中蓝色箭头表示物质循环的方向, 红色箭头表示信号传递的方向, 黑色箭头表示昆

虫对植株的损伤。The colored lines in the figure indicate mycorrhizal networks of different species (red, blue, green). The blue arrows indicate the direction

of the material cycle; the red arrows indicate the direction in which the signal is transmitted; the black arrow indicates damage to the plant by insects.

第 11 期 储 薇等 : 丛枝菌根真菌 -植物 -根际微生物互作研究进展与展望 1715

http://www.ecoagri.ac.cn

MNs和菌根对植物群落受到干扰后幼苗的建立十分

关键, 对于因立地退化、外来AM杂草入侵或气候

变化胁迫区域再造林至关重要。由于根系具有许多

以前被忽视的潜在基因变异, 许多科学家开始把根

系视为生产高产作物的核心, 并将注意力转向根系

以期提高作物产量, 并认为根系是第二次绿色革命

的关键[129]。然而, 这场地下革命仍处于初级阶段。

作物基因型、现实农艺实践、作物-AMF关联和作

物产量之间的关系较为复杂, 因此, 当科学提倡将

AMF用作可持续农业集约化的主要手段时, 就需要

强有力的系统农艺方法。

菌圈相互作用的新图景具有以前无法想象的复

杂性。其中不同的组合: 宿主植物-AMF-MHB可能

存在不同的相互作用, 并提供新的多功能效益, 改善

植物和真菌的性能。例如, MHB可以沿着菌丝移动

到相关的土壤(菌丝圈), 在那里它们可以提高养分的

有效性(例如溶P、固N和几丁质分解细菌)[130], 抑

制植物病原体(如铁载体和产生抗生素的细菌), 促进

植物生长(如产生IAA的细菌)等。为了解MHB的

不同组成是否决定了AMF分离株在传染性和效率

方面的不同性能, 破译MHB的关键代谢信号通路,

并阐明其作为菌根辅助菌的功能意义显得尤为重要。

接下来, 应该从表现最好的群落中分离单个菌株, 以

研究其功能意义, 并选择最佳的AMF-MHB组合来

用作生物肥料和生物增强剂。

其次, 植物和AMF之间的分子串扰才刚刚开始

被揭示, 与其他植物-微生物相互作用的知识[如根

瘤菌-豆科(Fabaceae)植物、疫霉-茄科(Solanaceae)

作物]相比明显滞后, 目前还不清楚哪些基因调控菌

根共生的建立和维持。因此, 探索植物与真菌分子

对话中的共生基因网络和掌握转录因子是理解植物

与真菌共存和菌根共生的关键因素。

另一个重大问题是将分子数据和代谢途径与生

态生理和生态过程联系起来, 例如获取营养、抵御

压力和疾病的保护。尽管AMF与植株共生已经表

现出良好的生产效益, 然而, 由于大多数科学文献报

道的研究都是在受控条件(生长室或温室、无菌基

质)下进行的, AMF在自然环境中的响应可能会发生

显著变化, 因为大量的生物和非生物胁迫会与这些

真菌相互作用, 并可能影响它们的性能。这使得评

估田间条件下AMF提高作物生产力的能力显得尤

为重要。

此外, 以真菌结构特别是孢子的形态特征为依

据仍是目前AMF菌种鉴定的主要依据[131], 但这种方

法很大程度上依赖于经验和资料的掌握。尽管分子

鉴定可以为其进行补充和完善, 获得各种菌根真菌

的个体基因组, 与植物根系相关的真菌群落的元基

因组也正在被揭示, 但完整的植物微生物群在很大

程度上是缺失的[132]。要了解菌根真菌与菌根网络的

其他成员之间的相互作用, 以及菌根如何与其他土

壤生物群相互作用来驱动生态系统的功能, 仍然是

一个重大挑战。测序技术和生物信息学的进步将有

可能解决这个问题。最后, 在全球环境变化的背景

下, 人类活动对菌根生长和功能的影响还没有得到

充分的理解, 仍需进一步探索。

参考文献 References

TEDERSOO L, BAHRAM M, ZOBEL M. How mycorrhizal

associations drive plant population and community biology[J].

Science, 2020, 367(6480): eaba1223

[1]

MIYAUCHI S, KISS E, KUO A, et al. Large-scale genome

sequencing of mycorrhizal fungi provides insights into the

early evolution of symbiotic traits[J]. Nature Communications,

2020, 11: 5125

[2]

TEDERSOO L, SáNCHEZ-RAMíREZ S, K?LJALG U, et al.

High-level classification of the fungi and a tool for

evolutionary ecological analyses[J]. Fungal Diversity, 2018,

90(1): 135?159

[3]

TORRES N, ANTOLíN M C, GOICOECHEA N. Arbuscular

mycorrhizal symbiosis as a promising resource for improving

berry quality in grapevines under changing environments[J].

Frontiers in Plant Science, 2018, 9: 897

[4]

SYMANCZIK S, LEHMANN M F, WIEMKEN A, et al.

Effects of two contrasted arbuscular mycorrhizal fungal

isolates on nutrient uptake by Sorghum bicolor under

drought[J]. Mycorrhiza, 2018, 28(8): 779?785

[5]

SHI W G, ZHANG Y H, CHEN S L, et al. Physiological and

molecular mechanisms of heavy metal accumulation in

nonmycorrhizal versus mycorrhizal plants[J]. Plant, Cell &

Environment, 2019, 42(4): 1087?1103

[6]

HEIJDEN M G A, MARTIN F M, SELOSSE M A, et al.

Mycorrhizal ecology and evolution: the past, the present, and

the future[J]. New Phytologist, 2015, 205(4): 1406?1423

[7]

DEAMALEY J, MARTOS F, SELOSSE M A. Fungal

Associations[M]. Berlin: Springer Berlin Heidelberg, 2012:

39–49

[8]

LUGINBUEHL L H, OLDROYD G E D. Understanding the

arbuscule at the heart of endomycorrhizal symbioses in

plants[J]. Current Biology, 2017, 27(17): R952?R963

[9]

ROTH R, HILLMER S, FUNAYA C, et al. Arbuscular cell

invasion coincides with extracellular vesicles and membrane

tubules[J]. Nature Plants, 2019, 5(2): 204?211

[10]

RUSSO G, CAROTENUTO G, FIORILLI V, et al. Ectopic

activation of cortical cell division during the accommodation

of arbuscular mycorrhizal fungi[J]. New Phytologist, 2019,

221(2): 1036?1048

[11]

KOBAE Y, KAMEOKA H, SUGIMURA Y, et al.

Strigolactone biosynthesis genes of rice are required for the

[12]

1716 中国生态农业学 报 (中英文 )?2022 第 30 卷

http://www.ecoagri.ac.cn

punctual entry of arbuscular mycorrhizal fungi into the

roots[J]. Plant and Cell Physiology, 2018, 59(3): 544?553

ZHONG Y L, CHU C J, MYERS J A, et al. Arbuscular

mycorrhizal trees influence the latitudinal beta-diversity

gradient of tree communities in forests worldwide[J]. Nature

Communications, 2021, 12(1): 3137

[13]

JIANG Y N, WANG W X, XIE Q J, et al. Plants transfer lipids

to sustain colonization by mutualistic mycorrhizal and parasitic

fungi[J]. Science, 2017, 356(6343): 1172?1175

[14]

KAMEOKA H, TSUTSUI I, SAITO K, et al. Stimulation of

asymbiotic sporulation in arbuscular mycorrhizal fungi by fatty

acids[J]. Nature Microbiology, 2019, 4(10): 1654?1660

[15]

SALVIOLI A, GHIGNONE S, NOVERO M, et al. Symbiosis

with an endobacterium increases the fitness of a mycorrhizal

fungus, raising its bioenergetic potential[J]. The ISME Journal,

2016, 10(1): 130?144

[16]

TESTE F P, SIMARD S W. Mycorrhizal networks and

distance from mature trees alter patterns of competition and

facilitation in dry Douglas-fir forests[J]. Oecologia, 2008,

158(2): 193?203

[17]

WANG S S, CHEN A Q, XIE K, et al. Functional analysis of

the OsNPF4.5 nitrate transporter reveals a conserved

mycorrhizal pathway of nitrogen acquisition in plants[J].

Proceedings of the National Academy of Sciences of the

United States of America, 2020, 117(28): 16649?16659

[18]

ROUPHAEL Y, FRANKEN P, SCHNEIDER C, et al.

Arbuscular mycorrhizal fungi act as biostimulants in

horticultural crops[J]. Scientia Horticulturae, 2015, 196:

91?108

[19]

AVERKINA I O, HARRIS M, ASARE E O, et al. Pinpointing

regulatory protein phosphatase 2A subunits involved in

beneficial symbiosis between plants and microbes[J]. BMC

Plant Biology, 2021, 21(1): 183

[20]

WIPF D, KRAJINSKI F, VAN TUINEN D, et al. Trading on

the arbuscular mycorrhiza market: from arbuscules to common

mycorrhizal networks[J]. The New Phytologist, 2019, 223(3):

1127?1142

[21]

孙思淼, 常伟, 宋福强. 丛枝菌根真菌提高盐胁迫植物抗

氧 化 机 制 的 研 究 进 展[J]. 应 用 生 态 学 报, 2020, 31(10):

3589?3596

SUN S M, CHANG W, SONG F Q. Mechanism of arbuscular

mycorrhizal fungi improve the oxidative stress to the host

plants under salt stress: a review[J]. Chinese Journal of

Applied Ecology, 2020, 31(10): 3589?3596

[22]

HERNáNDEZ D H, LARSEN J, GONZáLEZ-RODRíGUEZ

A, et al. Cooperation between Sporobolus airoides and

associated arbuscular mycorrhizal fungi for phosphorus

acquisition under drought conditions in an oligotrophic desert

ecosystem[J]. Rhizosphere, 2020, 15: 100225

[23]

WANG Z G, BI Y L, JIANG B, et al. Arbuscular mycorrhizal

fungi enhance soil carbon sequestration in the coalfields,

Northwest China[J]. Scientific Reports, 2016, 6: 34336

[24]

INGRAFFIA R, AMATO G, FRENDA A S, et al. Impacts of

arbuscular mycorrhizal fungi on nutrient uptake, N2 fixation, N

transfer, and growth in a wheat/faba bean intercropping

system[J]. PLoS One, 2019, 14(3): e0213672

[25]

MURATA-KATO S, SATO R, ABE S, et al. Partial

mycoheterotrophy in green plants forming Paris-type

[26]

arbuscular mycorrhiza requires a thorough investigation[J].

The New Phytologist, 2022, 234(4): 1112?1118

SELOSSE M, ROY M. Green plants that feed on fungi: facts

and questions about mixotrophy[J]. Trends in Plant Science,

2009, 14(2): 64?70

[27]

SHI J, ZHAO B, ZHENG S, et al. A phosphate starvation

response-centered network regulates mycorrhizal symbiosis[J].

Cell, 2021, 184(22): 5527?5540

[28]

SHETEIWY M S, ALI D F I, XIONG Y, et al. Physiological

and biochemical responses of soybean plants inoculated with

arbuscular mycorrhizal fungi and Bradyrhizobium under

drought stress[J]. BMC Plant Biology, 2021, 21(1): 195

[29]

WANG X X, HOFFLAND E, FENG G, et al. Phosphate

uptake from phytate due to hyphae-mediated phytase activity

by arbuscular mycorrhizal maize[J]. Frontiers in Plant Science,

2017, 8: 684

[30]

TRISILAWATI O. Effect of arbuscular mycorrhizal fungi

biofertilizer on the growth of cashew seedling[J]. Journal

Penelitian Tanaman Industri, 2020, 17(4): 150

[31]

THIOYE B, LEGRAS M, CASTEL L, et al. Understanding

arbuscular mycorrhizal colonization in walnut plantations: the

contribution of cover crops and soil microbial communities[J].

Agriculture, 2021, 12(1): 1

[32]

PENG Q, WU M M, ZHANG Z K, et al. The interaction of

arbuscular mycorrhizal fungi and phosphorus inputs on

selenium uptake by alfalfa (Medicago sativa L.) and selenium

fraction transformation in soil[J]. Frontiers in Plant Science,

2020, 11: 966

[33]

YE S P, YANG Y J, XIN G R, et al. Studies of the Italian

ryegrass-rice rotation system in Southern China: Arbuscular

mycorrhizal symbiosis affects soil microorganisms and enzyme

activities in the Lolium mutiflorum L. rhizosphere[J]. Applied

Soil Ecology, 2015, 90: 26?34

[34]

NOPPHAKAT K, RUNSAENG P, KLINNAWEE L.

Acaulospora as the dominant arbuscular mycorrhizal fungi in

organic lowland rice paddies improves phosphorus availability

in soils[J]. Sustainability, 2021, 14(1): 31

[35]

SATO T, EZAWA T, CHENG W G, et al. Release of acid

phosphatase from extraradical hyphae of arbuscular

mycorrhizal fungus Rhizophagus clarus[J]. Soil Science and

Plant Nutrition, 2015, 61(2): 269?274

[36]

SATO T, HACHIYA S, INAMURA N, et al. Secretion of acid

phosphatase from extraradical hyphae of the arbuscular

mycorrhizal fungus Rhizophagus clarus is regulated in

response to phosphate availability[J]. Mycorrhiza, 2019, 29(6):

599?605

[37]

SMITH S E, MANJARREZ M, STONOR R, et al. Indigenous

arbuscular mycorrhizal (AM) fungi contribute to wheat

phosphate uptake in a semi-arid field environment, shown by

tracking with radioactive phosphorus[J]. Applied Soil Ecology,

2015, 96: 68?74

[38]

李海燕, 束怀瑞, 刘润进. VAM真菌诱导植物产生防御反

应的生物化学及分子生物学基础[J]. 山东农业大学学报(自

然科学版), 2002, 33(1): 107?111

LI H Y, SHU H R, LIU R J. The basis of biochemistry and

molecular biology for the defence responses induced by vam

fungi[J]. Journal of Shandong Agricultural University, 2002,

33(1): 107?111

[39]

第 11 期 储 薇等 : 丛枝菌根真菌 -植物 -根际微生物互作研究进展与展望 1717

http://www.ecoagri.ac.cn

HASHEM A, AKHTER A, ALQARAWI A A, et al.

Mycorrhizal fungi induced activation of tomato defense system

mitigates Fusarium wilt stress[J]. Saudi Journal of Biological

Sciences, 2021, 28(10): 5442?5450

[40]

JAHROMI F, AROCA R, PORCEL R, et al. Influence of

salinity on the in vitro development of Glomus intraradices

and on the in vivo physiological and molecular responses of

mycorrhizal lettuce plants[J]. Microbial Ecology, 2008, 55(1):

45?53

[41]

HUANG Z, ZOU Z R, HE C X, et al. Physiological and

photosynthetic responses of melon (Cucumis melo L.)

seedlings to three Glomus species under water deficit[J]. Plant

and Soil, 2011, 339(1/2): 391?399

[42]

WU Q S, SRIVASTAVA A K, ZOU Y N. AMF-induced

tolerance to drought stress in citrus: a review[J]. Scientia

Horticulturae, 2013, 164: 77?87

[43]

JABBOROVA D, ANNAPURNA K, AL-SADI A M, et al.

Biochar and arbuscular mycorrhizal fungi mediated enhanced

drought tolerance in Okra (Abelmoschus esculentus) plant

growth, root morphological traits and physiological

properties[J]. Saudi Journal of Biological Sciences, 2021,

28(10): 5490?5499

[44]

SMITH S E, JAKOBSEN I, GR?NLUND M, et al. Roles of

arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition:

interactions between pathways of phosphorus uptake in

arbuscular mycorrhizal roots have important implications for

understanding and manipulating plant phosphorus

acquisition[J]. Plant Physiology, 2011, 156(3): 1050?1057

[45]

OMIROU M, IOANNIDES I M, EHALIOTIS C. Mycorrhizal

inoculation affects arbuscular mycorrhizal diversity in

watermelon roots, but leads to improved colonization and plant

response under water stress only[J]. Applied Soil Ecology,

2013, 63: 112?119

[46]

AUGé R M. Water relations, drought and vesicular-arbuscular

mycorrhizal symbiosis[J]. Mycorrhiza, 2001, 11(1): 3?42

[47]

ALVES G S, BERTINI S C B, BARBOSA B B, et al. Fungal

endophytes inoculation improves soil nutrient availability,

arbuscular mycorrhizal colonization and common bean

growth[J]. Rhizosphere, 2021, 18: 100330

[48]

JANOU?KOVá M, VOSáTKA M, ROSSI L, et al. Effects of

arbuscular mycorrhizal inoculation on cadmium accumulation

by different tobacco (Nicotiana tabacum L.) types[J]. Applied

Soil Ecology, 2007, 35(3): 502?510

[49]

EL-SAWAH A, EL-KEBLAWY A, ALI D N, et al. Arbuscular

mycorrhizal fungi and plant growth-promoting rhizobacteria

enhance soil key enzymes, plant growth, seed yield, and

qualitative attributes of guar[J]. Agriculture, 2021, 11(3): 194

[50]

YOU Y Q, WANG L, JU C, et al. Effects of arbuscular

mycorrhizal fungi on the growth and toxic element uptake of

Phragmites australis (Cav.) Trin. ex Steud under

zinc/cadmium stress[J]. Ecotoxicology and Environmental

Safety, 2021, 213: 112023

[51]

XIAO Y, ZHAO Z J, CHEN L, et al. Arbuscular mycorrhizal

fungi mitigate the negative effects of straw incorporation on

Trifolium repens in highly Cd-polluted soils[J]. Applied Soil

Ecology, 2021, 157: 103736

[52]

LIU L Z, GONG Z Q, ZHANG Y L, et al. Growth, cadmium

accumulation and physiology of marigold (Tagetes erecta L.)

[53]

as affected by arbuscular mycorrhizal fungi[J]. Pedosphere,

2011, 21(3): 319?327

BASLAM M, GARMENDIA I, GOICOECHEA N. Arbuscular

mycorrhizal fungi (AMF) improved growth and nutritional

quality of greenhouse-grown lettuce[J]. Journal of Agricultural

and Food Chemistry, 2011, 59(10): 5504?5515

[54]

CASTELLANOS-MORALES V, VILLEGAS J, WENDELIN

S, et al. Root colonisation by the arbuscular mycorrhizal

fungus Glomus intraradices alters the quality of strawberry

fruits (Fragaria × ananassa Duch.) at different nitrogen

levels[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2010,

90: 1774?1782

[55]

TORRES N, GOICOECHEA N, ZAMARRE?O A M, et al.

Mycorrhizal symbiosis affects ABA metabolism during berry

ripening in Vitis vinifera L. cv. Tempranillo grown under

climate change scenarios[J]. Plant Science, 2018, 274:

383?393

[56]

SALES F R, SILVA A O, SALES L R, et al. Native arbuscular

mycorrhizal fungi exhibit biotechnological potential in

improvement of soil biochemical quality and in increasing

yield in sugarcane cultivars[J]. Sugar Tech, 2021, 23(6):

1235?1246

[57]

GóMEZ-BELLOT M J, ORTU?O M F, NORTES P A, et al.

Mycorrhizal Euonymus plants and reclaimed water: Biomass,

water status and nutritional responses[J]. Scientia Horticulturae,

2015, 186: 61?69

[58]

HOEKSEMA J D, CHAUDHARY V B, GEHRING C A, et al.

A meta-analysis of context-dependency in plant response to

inoculation with mycorrhizal fungi[J]. Ecology Letters, 2010,

13(3): 394?407

[59]

ZHENG J Q, CUI M M, WANG C, et al. Elevated CO2,

warming, N addition, and increased precipitation affect

different aspects of the arbuscular mycorrhizal fungal

community[J]. The Science of the Total Environment, 2022,

806(Pt 1): 150522

[60]

HART M M, FORSYTHE J, OSHOWSKI B, et al. Hiding in a

crowd — does diversity facilitate persistence of a low-quality

fungal partner in the mycorrhizal symbiosis?[J]. Symbiosis,

2013, 59(1): 47?56

[61]

OLSSON P A, RAHM J, ALIASGHARZAD N. Carbon

dynamics in mycorrhizal symbioses is linked to carbon costs

and phosphorus benefits[J]. FEMS Microbiology Ecology,

2010, 72(1): 125?131

[62]

KIERS E T, DUHAMEL M, BEESETTY Y, et al. Reciprocal

rewards stabilize cooperation in the mycorrhizal symbiosis[J].

Science, 2011, 333(6044): 880?882

[63]

MUTHUKUMAR T, UDAIYAN K, MANIAN S. Vesicular-

arbuscular mycorrhizae in tropical sedges of southern India[J].

Biology and Fertility of Soils, 1996, 22(1/2): 96?100

[64]

LANFRANCO L, FIORILLI V, GUTJAHR C. Partner

communication and role of nutrients in the arbuscular

mycorrhizal symbiosis[J]. The New Phytologist, 2018, 220(4):

1031?1046

[65]

TESTE F P, KARDOL P, TURNER B L, et al. Plant-soil

feedback and the maintenance of diversity in Mediterranean-

climate shrublands[J]. Science, 2017, 355(6321): 173?176

[66]

GAO D M, PAN X J, RAHMAN M K U, et al. Common

mycorrhizal networks benefit to the asymmetric interspecific

[67]

1718 中国生态农业学 报 (中英文 )?2022 第 30 卷

http://www.ecoagri.ac.cn

facilitation via K exchange in an agricultural intercropping

system[J]. Biology and Fertility of Soils, 2021, 57(7): 959?971

WAGG C, VEIGA R, VAN DER HEIJDEN M G A.

Facilitation and antagonism in mycorrhizal networks[M]//

HORTON T R. Mycorrhizal Networks. Dordrecht: Springer,

2015: 203–226

[68]

NJERU E M, AVIO L, BOCCI G, et al. Contrasting effects of

cover crops on ‘hot spot’ arbuscular mycorrhizal fungal

communities in organic tomato[J]. Biology and Fertility of

Soils, 2015, 51(2): 151?166

[69]

BARTO E K, HILKER M, MüLLER F, et al. The fungal fast

lane: common mycorrhizal networks extend bioactive zones of

allelochemicals in soils[J]. PLoS One, 2011, 6(11): e27195

[70]

FILIPPI C, BAGNOLI G, CITERNESI A S, et al.

Ultrastructural spatial distribution of bacteria associated with

sporocarps of Glomus mosseae[J]. Symbiosis, 1998, 24: 1?12

[71]

ARTURSSON V, JANSSON J K. Use of bromodeoxyuridine

immunocapture to identify active bacteria associated with

arbuscular mycorrhizal hyphae[J]. Applied and Environmental

Microbiology, 2003, 69(10): 6208?6215

[72]

HILDEBRANDT U, OUZIAD F, MARNER F J, et al. The

bacterium Paenibacillus validus stimulates growth of the

arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices up to the

formation of fertile spores[J]. FEMS Microbiology Letters,

2006, 254(2): 258?267

[73]

LI B, RAVNSKOV S, XIE G L, et al. Biocontrol of Pythium

damping-off in cucumber by arbuscular mycorrhiza-associated

bacteria from the genus Paenibacillus[J]. BioControl, 2007,

52(6): 863?875

[74]

JANSA J, BUKOVSKá P, GRYNDLER M. Mycorrhizal

hyphae as ecological niche for highly specialized

hypersymbionts - or just soil free-riders?[J]. Frontiers in Plant

Science, 2013, 4: 134

[75]

BAREA J M, AZCóN R, AZCóN-AGUILAR C.

Mycorrhizosphere interactions to improve plant fitness and soil

quality[J]. Antonie Van Leeuwenhoek, 2002, 81(1/2/3/4):

343?351

[76]

RICHARDSON A E, BAREA J M, MCNEILL A M, et al.

Acquisition of phosphorus and nitrogen in the rhizosphere and

plant growth promotion by microorganisms[J]. Plant and Soil,

2009, 321(1/2): 305?339

[77]

BIDONDO L F, COLOMBO R P, BOMPADRE M J, et al.

Cultivable bacteria associated with infective propagules of

arbuscular mycorrhizal fungi. Implications for mycorrhizal

activity[J]. Applied Soil Ecology, 2016, 105: 86?90

[78]

ROESTI D, INEICHEN K, BRAISSANT O, et al. Bacteria

associated with spores of the arbuscular mycorrhizal fungi

Glomus geosporum and Glomus constrictum[J]. Applied and

Environmental Microbiology, 2005, 71(11): 6673?6679

[79]

LONG L K, ZHU H H, YAO Q, et al. Analysis of bacterial

communities associated with spores of Gigaspora margarita

and Gigaspora rosea[J]. Plant and Soil, 2008, 310(1/2): 1?9

[80]

MOHITE B. Isolation and characterization of indole acetic acid

(IAA) producing bacteria from rhizospheric soil and its effect

on plant growth[J]. Journal of Soil Science and Plant Nutrition,

2013, 13(3): 638?649

[81]

KRISHNAMOORTHY R, KIM K, SUBRAMANIAN P, et al.

Arbuscular mycorrhizal fungi and associated bacteria isolated

[82]

from salt-affected soil enhances the tolerance of maize to

salinity in coastal reclamation soil[J]. Agriculture, Ecosystems &

Environment, 2016, 231: 233?239

BENEDUZI A, AMBROSINI A, PASSAGLIA L M P. Plant

growth-promoting rhizobacteria (PGPR): their potential as

antagonists and biocontrol agents[J]. Genetics and Molecular

Biology, 2012, 35(4 suppl): 1044?1051

[83]

VAHEDI R, RASOULI-SADAGHIANI M, BARIN M, et al.

Interactions between biochar and compost treatment and

mycorrhizal fungi to improve the qualitative properties of a

calcareous soil under rhizobox conditions[J]. Agriculture,

2021, 11(10): 993

[84]

VISEN A, BOHRA M, SINGH P N, et al. Two pseudomonad

strains facilitate AMF mycorrhization of litchi (Litchi chinensis

Sonn.) and improving phosphorus uptake[J]. Rhizosphere,

2017, 3: 196?202

[85]

VANNINI C, DOMINGO G, FIORILLI V, et al. Proteomic

analysis reveals how pairing of a mycorrhizal fungus with plant

growth-promoting bacteria modulates growth and defense in

wheat[J]. Plant, Cell & Environment, 2021, 44(6): 1946?1960

[86]

STIRK W A, STADEN J. Flow of cytokinins through the

environment[J]. Plant Growth Regulation, 2010, 62(2):

101?116

[87]

AZIZI S, KOUCHAKSARAEI M T, HADIAN J, et al. Dual

inoculations of arbuscular mycorrhizal fungi and plant growth-

promoting rhizobacteria boost drought resistance and essential

oil yield of common myrtle[J]. Forest Ecology and

Management, 2021, 497: 119478

[88]

SONG C, SARPONG C K, ZHANG X F, et al.

Mycorrhizosphere bacteria and plant-plant interactions

facilitate maize P acquisition in an intercropping system[J].

Journal of Cleaner Production, 2021, 314: 127993

[89]

MENG L B, ZHANG A Y, WANG F, et al. Arbuscular

mycorrhizal fungi and Rhizobium facilitate nitrogen uptake and

transfer in soybean/maize intercropping system[J]. Frontiers in

Plant Science, 2015, 6: 339

[90]

CHEN L, SWENSON N G, JI N N, et al. Differential soil

fungus accumulation and density dependence of trees in a

subtropical forest[J]. Science, 2019, 366(6461): 124?128

[91]

SMITH S E, READ D J. Mycorrhizal symbiosis[J]. Quarterly

Review of Biology, 2008, 3(3): 273?281

[92]

FRITZ M, JAKOBSEN I, LYNGKJ?R M F, et al. Arbuscular

mycorrhiza reduces susceptibility of tomato to Alternaria

solani[J]. Mycorrhiza, 2006, 16(6): 413?419

[93]

黄京华, 曾任森, 骆世明. AM菌根真菌诱导对提高玉米纹

枯病抗性的初步研究[J]. 中国生态农业学报, 2006, 14(3):

167?169

HUANG J H, ZENG R S, LUO S M. Studies on disease

resistance of maize toward sheath blight induced by arbuscular

mycorrhizal fungi[J]. Chinese Journal of Eco-Agriculture,

2006, 14(3): 167?169

[94]

LIN P, ZHANG M Y, WANG M Y, et al. Inoculation with

arbuscular mycorrhizal fungus modulates defense-related genes

expression in banana seedlings susceptible to wilt disease[J].

Plant Signaling & Behavior, 2021, 16(5): 1884782

[95]

李海燕, 刘润进, 束怀瑞. 丛枝菌根真菌提高植物抗病性

的作用机制[J]. 菌物系统, 2001, 20(3): 435?439

LI H Y, LIU R J, SHU H R. Mechanism of AM fungi

[96]

第 11 期 储 薇等 : 丛枝菌根真菌 -植物 -根际微生物互作研究进展与展望 1719

http://www.ecoagri.ac.cn

improving plant disease resistance[J]. Mycosystema, 2001,

20(3): 435?439

JACOTT C, MURRAY J, RIDOUT C. Trade-offs in

arbuscular mycorrhizal symbiosis: disease resistance, growth

responses and perspectives for crop breeding[J]. Agronomy,

2017, 7(4): 75

[97]

SINGH S, AWASTHI L P, VERMA H N. Systemic resistance

inducers from plants — an ecofriendly approach for the

management of viral diseases of crops[M]//AWSTHI L P.

Applied Plant Virology. Amsterdam: Elsevier, 2020: 603–617

[98]

PEPE A, GIOVANNETTI M, SBRANA C. Different levels of

hyphal self-incompatibility modulate interconnectedness of

mycorrhizal networks in three arbuscular mycorrhizal fungi

within the Glomeraceae[J]. Mycorrhiza, 2016, 26(4): 325?332

[99]

PIETERSE C M J, VAN DER DOES D, ZAMIOUDIS C, et al.

Hormonal modulation of plant immunity[J]. Annual Review of

Cell and Developmental Biology, 2012, 28: 489?521

[100]

PINEDA A, ZHENG S J, VAN LOON J J A, et al. Helping

plants to deal with insects: the role of beneficial soil-borne

microbes[J]. Trends in Plant Science, 2010, 15(9): 507?514

[101]

李岩, 李俊喜, 徐丽娟, 等. 分根培养系统中AM真菌抑制

大豆胞囊线虫病的效应[J]. 微生物学通报, 2010, 37(11):

1610?1616

LI Y, LI J X, XU L J, et al. The effectiveness of arbuscular

mycorrhizal fungi to antagonize soybean cyst nematode

disease[J]. Microbiology China, 2010, 37(11): 1610?1616

[102]

王艳玲, 胡正嘉. VA菌根真菌对蕃茄线虫病的影响[J]. 华

中农业大学学报, 2000, 19(1): 25?28

WANG Y L, HU Z J. Effect of VA mycorrhiza on

nematodiasis of tomato[J]. Journal of Huazhong Agricultural

University, 2000, 19(1): 25?28

[103]

SANGWAN S, PRASANNA R. Mycorrhizae helper bacteria:

unlocking their potential as bioenhancers of plant-arbuscular

mycorrhizal fungal associations[J]. Microbial Ecology, 2021,

84(1): 1?10

[104]

HARINIKUMAR K M, BAGYARAJ D J. Potential of

earthworms, ants, millipedes, and termites for dissemination of

vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi in soil[J]. Biology and

Fertility of Soils, 1994, 18(2): 115?118

[105]

GIOVANNETTI M, AVIO L, FORTUNA P, et al. At the root

of the wood wide web: self recognition and non-self

incompatibility in mycorrhizal networks[J]. Plant Signaling &

Behavior, 2006, 1(1): 1?5

[106]

CROLL D, GIOVANNETTI M, KOCH A M, et al. Nonself

vegetative fusion and genetic exchange in the arbuscular

mycorrhizal fungus Glomus intraradices[J]. New Phytologist,

2009, 181(4): 924?937

[107]

LEAKE J, JOHNSON D, DONNELLY D, et al. Networks of

power and influence: the role of mycorrhizal mycelium in

controlling plant communities and agroecosystem

functioning[J]. Canadian Journal of Botany, 2004, 82(8):

1016?1045

[108]

GIRLANDA M, SEGRETO R, CAFASSO D, et al.

Photosynthetic Mediterranean meadow orchids feature partial

mycoheterotrophy and specific mycorrhizal associations[J].

American Journal of Botany, 2011, 98(7): 1148?1163

[109]

COURTY P E, WALDER F, BOLLER T, et al. Carbon and

nitrogen metabolism in mycorrhizal networks and

[110]

mycoheterotrophic plants of tropical forests: a stable isotope

analysis[J]. Plant Physiology, 2011, 156(2): 952?961

SIMARD S W, BEILER K J, BINGHAM M A, et al.

Mycorrhizal networks: mechanisms, ecology and modelling[J].

Fungal Biology Reviews, 2012, 26(1): 39?60

[111]

SONG Y Y, ZENG R S, XU J F, et al. Interplant

communication of tomato plants through underground common

mycorrhizal networks[J]. PLoS One, 2010, 5(10): e13324

[112]

PIETIK?INEN A, KYT?VIITA M M. Defoliation changes

mycorrhizal benefit and competitive interactions between

seedlings and adult plants[J]. Journal of Ecology, 2007, 95(4):

639?647

[113]

BINGHAM M A, SIMARD S W. Do mycorrhizal network

benefits to survival and growth of interior Douglas-fir

seedlings increase with soil moisture stress?[J]. Ecology and

Evolution, 2011, 1(3): 306?316

[114]

AWAYDUL A, ZHU W Y, YUAN Y G, et al. Common

mycorrhizal networks influence the distribution of mineral

nutrients between an invasive plant, Solidago canadensis, and

a native plant, Kummerowa striata[J]. Mycorrhiza, 2019,

29(1): 29?38

[115]

ZHANG H L, WANG X Y, GAO Y Z, et al. Short-term N

transfer from alfalfa to maize is dependent more on arbuscular

mycorrhizal fungi than root exudates in N deficient soil[J].

Plant and Soil, 2020, 446(1/2): 23?41

[116]

LI C J, LI H G, HOFFLAND E, et al. Common mycorrhizal

networks asymmetrically improve chickpea N and P

acquisition and cause overyielding by a millet/chickpea

mixture[J]. Plant and Soil, 2022, 472(1/2): 279?293

[117]

MERCKX V. Mycoheterotrophy: the Biology of Plants Living

on Fungi[M]. Berlin: Springer, 2013: 19-101

[118]

TESTE F P, SIMARD S W, DURALL D M, et al. Net carbon

transfer between Pseudotsuga menziesii var. glauca seedlings

in the field is influenced by soil disturbance[J]. Journal of

Ecology, 2010, 98(2): 429?439

[119]

YUAN Y G, VAN KLEUNEN M, LI J M. A parasite

indirectly affects nutrient distribution by common mycorrhizal

networks between host and neighboring plants[J]. Ecology,

2021, 102(5): e03339

[120]

李莎, 斯那永宗, 徐若, 等. 丛枝菌丝网络介导苜蓿植株

间机械损伤信号的传递[J]. 热带亚热带植物学报, 2021,

29(4): 382?388

LI S, SINA Y Z, XU R, et al. Defense signal transmission

between alfalfa plants through underground mycorrhizal

network[J]. Journal of Tropical and Subtropical Botany, 2021,

29(4): 382?388

[121]

GIOVANNETTI M, AZZOLINI D, CITERNESI A S.

Anastomosis formation and nuclear and protoplasmic exchange

in arbuscular mycorrhizal fungi[J]. Applied and Environmental

Microbiology, 1999, 65(12): 5571?5575

[122]

ALAUX P L, NAVEAU F, DECLERCK S, et al. Common

mycorrhizal network induced JA/ET genes expression in

healthy potato plants connected to potato plants infected by

Phytophthora infestans[J]. Frontiers in Plant Science, 2020, 11:

602

[123]

ENGELMOER D J P, BEHM J E, KIERS E T. Intense

competition between arbuscular mycorrhizal mutualists in an in

vitro root microbiome negatively affects total fungal

[124]

1720 中国生态农业学 报 (中英文 )?2022 第 30 卷

http://www.ecoagri.ac.cn

abundance[J]. Molecular Ecology, 2014, 23(6): 1584?1593

MEDINA M J H, GAGNON H, PICHé Y, et al. Root

colonization by arbuscular mycorrhizal fungi is affected by the

salicylic acid content of the plant[J]. Plant Science, 2003,

164(6): 993?998

[125]

ALAUX P L, ZHANG Y Q, GILBERT L, et al. Can common

mycorrhizal fungal networks be managed to enhance

ecosystem functionality?[J]. Plants, People, Planet, 2021, 3(5):

433?444

[126]

DESLIPPE J R, SIMARD S W. Below-ground carbon transfer

among Betula nana may increase with warming in Arctic

tundra[J]. The New Phytologist, 2011, 192(3): 689?698

[127]

KANG F R, YANG B, WUJISIGULENG, et al. Arbuscular

mycorrhizal fungi alleviate the negative effect of nitrogen

deposition on ecosystem functions in meadow grassland[J].

Land Degradation & Development, 2020, 31(6): 748?759

[128]

GEWIN V. Food: an underground revolution[J]. Nature, 2010,

466(7306): 552?553

[129]

CRUZ A F, ISHII T. Arbuscular mycorrhizal fungal spores

host bacteria that affect nutrient biodynamics and biocontrol of

soil-borne plant pathogens[J]. Biology Open, 2012, 1(1):

52?57

[130]

GOTTEL N R, CASTRO H F, KERLEY M, et al. Distinct

microbial communities within the endosphere and rhizosphere

of Populus deltoides roots across contrasting soil types[J].

Applied and Environmental Microbiology, 2011, 77(17):

5934?5944

[131]

HACQUARD S, SCHADT C W. Towards a holistic

understanding of the beneficial interactions across the Populus

microbiome[J]. The New Phytologist, 2015, 205(4):

1424?1430

[132]







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