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保育猪耳尖坏死的病理机制及综合防控策略

 东秋元图书馆 2025-05-19

保育猪耳尖坏死(Ear Tip Necrosis, ETN)是一种常见且复杂的猪群健康问题,特别是在保育阶段,其病因涉及感染性因素、环境和管理因素。

本文重点探讨其病理机制及综合防控策略,特别关注猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)和副猪相关因素的潜在作用。

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耳尖坏死的病理与临床

一、典型症状

耳尖坏死多发生于断奶后2-4周保育猪,初期表现为耳尖血管收缩(苍白→发绀),随后出现干性坏疽。

1、病变进程(三个阶段):

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2、耳尖坏死进程

阶段Ⅰ(血管损伤期)

蓝耳病毒诱发血管壁ICAM-1表达↑→炎性细胞浸润

HPS分泌多糖荚膜→血小板聚集→毛细血管堵塞

阶段Ⅱ(组织缺血期)

耳尖远端血流量下降60%-70%(多普勒超声检测)

ATP合成不足→细胞膜Na+/K+泵失效→组织水肿

阶段Ⅲ(坏死脱落期)

中性粒细胞释放弹性蛋白酶→真皮层胶原降解

坏死区与健康组织分界带形成(肉眼可见黑褐色环)

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二、关键病理机制

微循环障碍:血管内皮损伤导致血小板聚集,形成微血栓(DIC早期表现)

氧化应激:谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性下降30-50%,自由基攻击细胞膜

混合感染:继发葡萄球菌、链球菌等化脓性细菌,加重组织溶解

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与蓝耳、副猪的关联机制

一、蓝耳病(PRRSV)的诱发作用

免疫抑制:PRRSV感染后肺泡巨噬细胞数量减少40-60%,降低机体清除病原能力

血管病变:病毒通过CD163受体侵入血管内皮细胞,引发血管炎(IL-6升高3-5倍)

协同效应:PRRSV阳性猪群耳尖坏死发生率(18-25%)显著高于阴性群(3-5%)

二、副猪嗜血杆菌(Glässer's disease)的继发影响

纤维素性炎症:细菌荚膜多糖诱导纤维蛋白原沉积,加剧局部缺血(见图2)

交叉感染:副猪嗜血杆菌与链球菌混合感染时,耳尖病变进展速度加快2-3倍

血清型差异:血清5型菌株更易定植耳部组织(分离率可达82%)

三、三联征关联模型

耳尖坏死常作为PRRSV+副猪嗜血杆菌+链球菌混合感染的标志性症状,三者形成恶性循环:PRRSV免疫抑制 → 副猪嗜血杆菌定植 → 血管通透性增加 → 链球菌入侵 → 微血栓形成 → 耳尖坏死

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诊断与鉴别要点

    一、主要致病因素分类

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    二、鉴别诊断流程

    观察耳尖病变是否对称(PRRSV多双侧发病),耳尖坏死可作为蓝耳病活跃的早期预警指标!

    检测直肠温度(细菌感染常伴发热>40.5℃)

    病理切片观察微血栓(DIC指征)

    血清学检测PRRSV S/P值(>2.0提示活跃感染)

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    综合防控方案

    一、环境调控

    温度梯度管理:保育舍维持26-28℃,避免昼夜温差>5℃

    通风优化:每小时换气量8-10次,氨气浓度控制在15 ppm以下

    地面改良:采用漏缝地板+橡胶垫,减少足部冻伤诱发外周循环障碍

    二、免疫干预

    1、疫苗程序调整:

    PRRSV弱毒苗:3日龄滴鼻,21日龄肌注加强

    副猪嗜血杆菌多价苗:14日龄首免,间隔3周二免

    2、免疫增强剂:

    黄芪多糖(500 g/吨饲料)+ 酵母β-葡聚糖(200 g/吨)连续使用21天

    3、药物治疗方案

    紧急处理(发病初期)

    头孢噻呋(5mg/kg)+ 泰万菌素(8mg/kg)肌注,bid×5d

    耳尖局部涂抹银离子凝胶(每日2次,促进坏死组织脱落)

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    4、营养支持

    抗氧化组合:添加硒酵母(0.3 ppm) + 维生素C(200 g/吨)

    必需脂肪酸:亚麻籽油(1.5%饲料添加)改善微循环

    纤维调控:可溶性纤维(甜菜粕)与不可溶性纤维(麸皮)比例1:2

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    结论

    在生产管理中,当10%保育猪出现耳部轻微发绀时,应立即检测PRRSV活跃度,建议配备红外热成像仪(精度0.1℃)用于耳尖温度监测,并对人员定期进行耳部病变评分培训(采用1-5级评分标准)。

    通过多维度干预,可将耳廓坏死从单纯的局部病变管理,升级为猪群健康状态的生物安全预警指标,实现疫病防控的关口前移。

    主要参考文献与数据来源:

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