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伊红，是我们常用的染料，英文名为Eosin，又叫四溴荧光素，是一种混合物。伊红是生物学上常用的染料，一般观察细胞用的HE染色，其中的E就是伊红的简称。
伊红的分子式，但是实际试用的是混合物，而非纯净物，根据溶解度不同，分为水溶性和醇溶性的两种，水溶性的并不是不溶于醇，而是溶解度较小的缘故。
因为常用，所以科里面有许多以前购买的伊红试剂，反正我们上班之后一直用的就是那些试剂，技术员说，从来没有购买过。不过最近技术员说配置的伊红不怎么着色，她用的方法大概是2.5-5g伊红，溶于500毫升蒸馏水中配称伊红染液；后来我看了一下，还有其他的方法，就用另外一种方法：伊红0.5克，蒸馏水75毫升，95%的酒精25毫升，以前用这种方法配的着色还行，不过这次用这种方法配，着色效果也不是很好。
大家找不到原因，最后担心是不是试剂时间太长，过了失效期了？不过试剂瓶上并没有有效期一说。就想到到病理技术网上问问，后来丁老师给了一个方法：2.5克溶于500毫升水当中，然后加入10毫升浓盐酸，静置过夜然后过滤，之后把放置烤箱内烤干，用这些干燥物，加95%的酒精1000毫升配称原液，用时可以用1：1到1：2的比例稀释。
其实这个方法以前看到过，只不过没有看明白。最主要的疑惑就是不知道用水溶解之后过滤剩余的该如何处理？难道要把这些滤液倒掉吗？所以一直有着用的一个疑问。这个疑问是因为我们用的是水溶性的伊红，在水中的溶解度比较高，简单的方法直接就可以使用，这些滤液倒掉岂不可惜。
但是实际操作的时候，发现原来自己的担心是多余的。
因为伊红溶解添加浓盐酸10毫升之后，原来的水溶液逐渐出现浑浊，最后慢慢地出现分层，上层的是淡黄色的清亮液体，而下面粉红色的絮状沉淀。原来是添加酸之后，水溶液里出现了絮状沉淀。这样伊红是不会随着过滤流掉的。看到这个现象才明白了这样做的目的，这样第二天过滤之后，原来的伊红不仅没有减少，似乎反而多了点。这样做的目的是把原来的水溶性的伊红变成了醇溶性的了。
之后按照操作，加入95%的酒精配成原液，我看了一下醇溶性伊红的配制方法，2.5克也就可以配置成500毫升的伊红溶液。当天让技术员试了试，着色非常好，稍不注意，伊红染色就过了。
不过500毫升，是手工用的量，要是在染色机上，要1000毫升才行，可是这次因为是试做，所以没有敢用太大的量。可以配置成1000毫升的染液。想想丁老师的是用的饱和液，没有介绍具体比例，而后来在百度百科里面给的比例是2.5克，可以配成1000毫升的染液。想想技术员之所以稍一染色，就出现染色过的原因，估计是染液浓度太大，看来下周稀释一下，可以直接使用了。
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