液体活检技术,由于其非侵入性取样特性,是检测肿瘤、辅助治疗的突破性技术,特别是来自血浆的循环游离DNA (Circulating free DNA or cell free DNA, cfDNA)检测,正迅速成为标准肿瘤活检的重要微创辅助手段,甚至可能是一种潜在替代方法。到底什么是液体活检?cfDNA又有怎样的技术优越性和目前的最新临床研究?以及我们如何给临床提供相关的检测服务?今天小编详细道来。 监测利器——循环游离DNA(cfDNA) 外周血来源的cfDNA,既包括肿瘤来源的(circulating tumor DNA,ctDNA),也包含非肿瘤来源的。cfDNA是细胞凋亡或坏死后释放到血液中片段化DNA,长度约为150-200bp,半衰期不足1小时。前期研究发现,只有当ctDNA占cfDNA中丰度的10%或以上时,才能得到准确的肿瘤信息。当然液体活检不仅限于血液检测,如尿液、粪便、脑脊液、唾液、胸腔和腹腔积液都是cfDNA的潜在来源,上述部位的cfDNA分析可能适用于特定癌症类型[1]。 cfDNA 取样和分析 由于肿瘤释放的cfDNA的水平低,半衰期短,稳定性差等特点。所以采集样品时要采用含固定剂的专用cfDNA收集管,以稳定cfDNA和细胞,保证室温条件下储存7至14天,便于运输、存储和集中处理。目前基于PCR分析的突变特异性技术,例如ddPCR,可识别cfDNA中等位基因频率低至0.01%甚至更低的突变,当然NGS也适用于cfDNA检测。 图1 cfDNA 的提取和分析1 cfDNA最新研究进展 由于血液中的ctDNA分子含量通常远低于非肿瘤来源的DNA片段,这使得检测它们非常困难,特别是在癌症的早期阶段。 为了突破这些限制性问题,英国剑桥大学科学家Nitzan Rosenfeld带领的团队发现了血液中肿瘤和非肿瘤来源DNA片段的长度分布特征的不同。首先,他们在体外富集血浆中特定片段长度的cfDNA,然后测序,结果发现用测序结果区分来自肿瘤患者和健康人的血液样本时,曲线下面积超过0.99,而未富集的普通cfDNA检测只有不到0.8[2]。 图2 片段特异性测序ROC曲线图 带有癌症突变的ctDNA在90-150bp区间的丰度较高,科学家们用这种片段化选择测序的方法监控肿瘤病人进展,发现比CT成像提前了2个月,而比未经过片段选择性的液体活检提前了3个月。 不过,研究者也指出在体外对不同片段长度的DNA进行分离时可能不能准确反应小于100bp和大于300bp长度的ctDNA。 希望这个片段特异富集进行液体活检的方法,未来可以尽早在临床上开展开来。 无独有偶,澳大利亚昆士兰大学Laura G. Carrascosa和Matt Trau领导的团队宣称,他们可以通过检测肿瘤组织或血液DNA的甲基化状况,在10分钟以内就能判断受试者是否患癌;而且更加令人震惊的是加入DNA之后,检测人员只需要根据颜色变化,就能判断受试者是否患癌[3]。 Trau博士团队开发了一种胶体金试剂来指示DNA与金纳米颗粒的结合情况,试剂的原本颜色是红色,当加入肿瘤细胞DNA时,溶液会保持原来的颜色;当加入正常细胞DNA,溶液会变成蓝色。 图3 DNA与金纳米颗粒的结合图3 研究者称,这项技术现在还无法准确分辨出癌症的类型,但是可以作为一种筛查手段。这项技术简单快捷,有广阔的应用前景,希望在不久的将来能够运用到临床。 cfDNA的临床运用 早期癌症检测分子诊断 由于血液中的ctDNA分子含量非常低,做到早期癌症检测非常困难。宝藤生物针对乳腺癌、卵巢癌、结直肠癌、甲状腺癌和肺癌推出了“早筛1号”产品,检测特定位点的突变,利用高灵敏度无创检测技术从基因水平上评估罹患肿瘤风险。 2 分子诊断 前期研究表明,同时获得的血浆和组织样本检测关键驱动基因突变,一致度高达80-90%。宝藤生物检测有推出“监控1号” 检测患者体内相关突变基因ctDNA含量变化。 3 预后追踪监控 临床上,对于治疗实体瘤的患者,一般首选手术治疗,辅助化放疗。通过检测cfDNA浓度变化,可以使已经治愈的患者免于接受潜在辅助化疗,而对于放化疗患者可以监控肿瘤复发的可能性。宝藤生物检测有推出“监控3号”检测cfDNA浓度变化监控患者体内cfDNA含量变化。 4 耐药监控 获得性耐药通常以个体中多个耐药性亚克隆为特征,这些耐药性亚克隆可以共存于相同的病变或不同的转移病灶,cfDNA检测有助于多重耐药机制的发现。宝藤生物有诸多检测T790M、C797S、ABL、PDGFRα、K-ras和N-ras等基因突变的耐药性检测,以及采用高通量测序“监控4号”检测相关耐药位点检测。
参考文献 [1]Corcoran, R. B. & Chabner, B. A. (2018). Application of Cell-free DNA Analysis to Cancer Treatment. The New England journal of medicine 379, 2018. [2]Mouliere, F., Chandrananda, D., Piskorz, A. M., Moore, E. K., Morris, J., Ahlborn, L. B., Mair, R., Goranova, T., Marass, F., Heider, K., Wan, J. C. M., Supernat, A., Hudecova, I., Gounaris, I., Ros, S., Jimenez-Linan, M., Garcia-Corbacho, J., Patel, K., Ostrup, O., Murphy, S., Eldridge, M. D., Gale, D., Stewart, G. D., Burge, J., Cooper, W. N., van der Heijden, M. S., Massie, C. E., Watts, C., Corrie, P., Pacey, S., Brindle, K. M., Baird, R. D., Mau-Sorensen, M., Parkinson, C. A., Smith, C. G., Brenton, J. D. & Rosenfeld, N. (2018). Enhanced detection of circulating tumor DNA by fragment size analysis. Science translational medicine 10, 2018. [3]Sina, A. A., Carrascosa, L. G., Liang, Z., Grewal, Y. S., Wardiana, A., Shiddiky, M. J. A., Gardiner, R. A., Samaratunga, H., Gandhi, M. K., Scott, R. J., Korbie, D. & Trau, M. (2018). Epigenetically reprogrammed methylation landscape drives the DNA self-assembly and serves as a universal cancer biomarker. Nature communications 9, 2018. |
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