报告中说,
处于好奇,我检索了以下,发现Promega想要借助CRISPR-Cas9技术敲入的报告基因是Hibit,而且在2017年有文章发表。 所以,本次文献阅读就从这里开始。 在2012年,Promega科学家改造了深海虾的体内的荧光素酶nanoluc, 这个酶比之前的萤火虫荧光素酶,海肾荧光素酶都要小。 小归小,但是他的活性是萤火虫和海肾的100倍,灵敏度也十分高,检测范围跨越7个数量级,他们找到的反应底物是Furimazine: 基于这个新的荧光素酶,promega更新了他们的产品线。 回到本文的题目,假如我研究的蛋白表达量比较低而且没有什么可靠的抗体怎么办呢?比如,你发现了一个新的蛋白,但是丰度不高。 第一种方法就是,尝试去做抗体,这个需要财力和运气。 我们很容易想到,标签可以用绿色荧光蛋白GFP,这可是获得了诺贝尔奖的。 让人生气的是,在科学研究中,几乎每一个你拍案叫绝的idea都有人在你之前尝试了。在2015年的NC上,有人把GFP定点插入到了基因组上, 但是,问题是,GFP有27Kda,对于一些小蛋白来说,就是庞然大物,想想一个10kDa的蛋白身上接着一个27Kda的GFP,如何施展拳脚。那就把它切开啊,变成大小亚基,把小的接在基因上就可以啦,对的,有人已经想到了,很绝望是不是,世上聪明人多了去了,每次我提出一个idea并且告诉老板没有人做过时,老板总会说
所以,我很谨慎。 他们把GFP切成两半,一半是GFP1-10,一半是GFP11,后者只有16个氨基酸,必须两个碰在一起才能发光。 但是本文的作者说,他那个系统有问题:
这个是在前言说的,我很喜欢看前言,那个是产生idea的地方,作者此时话头一转,说,我们的深海虾的Nanoluc灵敏度特别强,只要你在,我就能检测到你,正好可以弥补这个系统的缺陷。此时,作者承认,这个idea来自于别人,
接下来他们就开发了NaboBit技术 他们把这个nanoluc蛋白从156和157氨基酸之间切断,变成了大小两个亚基,此时他不发光了,但是合并在一起又可以发光。大的亚基叫large bit,小的亚基只有11个氨基酸,编码的蛋白只有1.3kDa。科学家对着11个氨基酸序列进行改造,又产生了两个不同亲和活性的基团,亲和活性小的叫smBit,用于研究蛋白相互作用,不是本次的重点,亲和活性高的那个叫Hibit,很小而且亲和性高,十分适合作为蛋白标签。本次就是讲的他。 如何实现tag的内源性嵌入呢?使用Crispr/cas9技术。 以GAPDH为例,简要步骤如下 设计crRNA要获取GAPDH的基因组序列,我们本次要把tag加载GAPDH的末尾 ![]() 其中crRNA的设计有很多网站可以做 ![]() cas9的切割位点在pam序列前三个,这个切割位点需要在非翻译区,最好切割位点能在插入位点的40nt之内。 设计修复模板cas9切割基因组后,我们需要给他提供一个修复的模板 ![]() 这个就是修复模板的设计,两边要有50-80nt的同源臂,中间的HiBiT序列需要promega授权获取。 打开这个网址 http://www./HiBiT-synthesis 阅读一下,他说这个序列不能商用,只能配合promega的产品使用,而且你不能截取其中的部分序列私自使用。同意之后,序列会发到邮箱。 如果有同学这么做了,一定要注意,这是商业公司,你签署了这个协议就要遵守,要不然被发现了,promega公司会起诉你的学校,赔偿上亿。 准备 ribonucleoprotein (RNP) complex![]() 这一步很简单,其中tracrRNA ,cas9都是从IDT公司购买的成品,官网也是这么推荐的。 转入细胞官网推荐使用电转,把这个复合体导入细胞。但是用化学转染也是可以的。 检测24-48小时就可以检测,配合promega的产品可以自由检测蛋白。 ![]() 也可以实现活细胞的检测 ![]() 甚至可以实现不要抗体做western,转模之后直接显影。 ![]() 宣传手册中还比较了和elisa的区别 ![]() 综合来说,这个方法的特点就是,方便快捷。
假如你预测某个非编码RNA能够编码,如何实验证明呢?传统的方法是,针对ORF自己做抗体,必须在细胞内检测到才能说明问题。但是困境时,抗体不好做,即使有抗体蛋白表达量很低也无法检测。那么这个方法在2天内就可以解决这个问题。 假如我们掌握了这个方法,还能这么用呢?我可以把flag标签接在目的蛋白后面,这样,即使没有IP级别的抗体,也能实现内源性的Co-IP,这样高师姐的那一些列CO-IP的帖子又可以用起来了。不过,这时候,需要筛选稳定株,就是耗点力气而已。 此外,虽然这个方法不需要分子克隆,但是,掌握分析克隆才能自由地探索。 好了,这就是我们第1次的文献阅读。下次见。 |
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