你是否也常常为 RNA 提取感到困惑,每次提取都在不断接受各种挑战,例如 RNA 降解、低产率、低纯度以及 DNA 污染等等。此外,还会遇到各种各样的样品,却找不到一个普适的方法来解决。 今天,我们就给大家分享下 RNA 分离技巧,特别是最大限度地回收高质量、无 DNA 的 RNA 的实践经验。 收集样品后稳定 RNA RNA 是不稳定的,极易降解。许多样品含有高水平的 RNase,会快速降解 RNA。为了使之最小化,最好在采集时稳定样本中的 RNA。常用的样品稳定方法包括液氮快速冷冻、干冰乙醇浴或 -80 °C 冷冻室。然而,这些方法也有缺点,如核酸的冻融损伤。 最佳 RNA 稳定方法:
确保样品完全溶解 在 RNA 提取过程中,提高 RNA 产量和质量的最佳方法是保证样品完全裂解。然而,并不是所有的样本都对相同的裂解方案敏感。例如,血细胞(如淋巴细胞、PBMCs 等)和微生物细胞往往很难有效溶解,仅仅添加基于洗涤剂的裂解缓冲液可能并不够。 为了提高裂解效果,可以将裂解缓冲液与机械裂解步骤(研磨珠破碎)匹配,或者在裂解液上游加入酶裂解步骤(如蛋白酶 K、溶菌酶等)(图 1)。 DNA 的存在会使基于 UV/VIS 的定量方法(如 Nanodrop)发生偏差,从而人为地提高 RNA 的定量,使其高于实际水平。 此外,在更敏感的下游应用(例如 RNA-seq)中,它还可能导致错误读数。这可以通过多种方法实现(例如 TRIzol® 相分离、DNA 去除柱和 DNase 处理)。 Zymo Research 开发了一种新型的 RNA 提取试剂盒,该试剂盒具有新的缓冲液和离心柱体系,可以结合和提取 RNA,同时消除污染的 DNA。RNA 分离试剂盒包括用于柱上处理的 DNase I。 这消除了提取后 DNA 酶处理和清理步骤的需要,并简化了从提取到下游应用的过程。下面的图 3 说明了基于 PCR 缺乏 DNA 扩增,ZYMO 柱对 Dnase 处理是有效的。 针对不同类型样本推荐的 RNA 产品: 本方法无需传统 TRIZOL 提取方法的相分离,而且不需要使用任何有毒有害的试剂(例如氯仿),7 分钟就可完成整个操作步骤并且可以提取到含 microRNA 的总 RNA。 本表格针对各种样品列出了参考用量,详细用量请参见说明书
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