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IDEXX PEDV 检测体系在 PEDV 防控中的应用

 大伟0216 2019-12-13

IDEXX PEDV 检测体系

                   在 PEDV 防控中的应用

IDEXX | Test with confidence

猪流行性腹泻(porcine epidemic diarrhea, PED)是由猪流行性腹泻病毒(porcine epidemic diarrhea virus, PEDV)引起的一种以腹泻、呕吐、脱水和对哺乳仔猪高致死率(接近100%)为主要特征的急性、高度接触性的猪肠道传染病。2013年 PED 在美国大范围爆发,给美国养猪业造成了严重的经济损失,从而使得 PED 受到世界各国的关注。我国2010年就曾爆发过严重的 PED 疫情。近年来,PED 的流行更是越来越广泛,新的变异株不断出现,加之猪群流动频繁和地区养殖形势愈来愈复杂,严重影响了我国养猪业的健康发展[1]。

目前,PED 无有效治疗方法,主要以预防为主,包括:

(1)良好的生物安全措施

(2)疫苗免疫/人工感染(反饲)母猪

        刺激母猪免疫系统,提高保护性 PEDV IgA 抗体从初乳传递给新生仔猪。

针对上述两种防控措施,PEDV 抗原检测和抗体监控成为 PED 预防、控制和净化项目中的一项重要手段

IDEXX RealPCR PEDV RNA 检测预混液

在 PEDV 防控中的应用

与其他肠道冠状病毒相似,PEDV 能够通过发病猪或带毒猪的粪便大量排出,粪-口途径为病毒主要的传播途径,与发病猪直接接触或接触被污染的食物、饮水、车辆、人员及环境等也是重要的传播途径。此外,灰尘、气溶胶等载体也被证明是 PEDV 传播的途径[2]。PEDV 对环境的抵抗力较强,可以在以下环境中生存(实验条件下)[3]:

  • 在40 ℃、50 ℃和60 ℃及相对湿度为30%、50%和70%的粪便中存活7天;

  • 在-20 ℃或4 ℃的泥浆中可存活至少28天,在25 ℃的温度下,可存活至少14天;

  • 在潮湿的食物中可存活至少28天,在干燥的食物中可存活至少7天;

  • 在饮用和回收的水中可存活至少7天。

研究证明,10个拷贝数的 PEDV 即可感染新生仔猪并引起发病[4]IDEXX RealPCR* PEDV RNA 检测预混液分析敏感性可达10个拷贝数(图1),是检测和监控 PEDV RNA 的首选工具,能够帮助兽医和生产者及时发现 PDEV 感染,了解病毒在场内的流行情况,建立有效的生物安全措施以防止病毒进入或扩散。可应用于:

  • 不同生长阶段猪腹泻病原的检测。

  • 保证后备母猪在驯化过程对 PEDV 的完全暴露。

  • 新生仔猪(尤其是头胎仔猪)及断奶仔猪排毒情况的常规监测。

  • 环境及运输工具的常规监测,如对清洗和消毒后的产房和保育舍进行检测,确保完全和充分的卫生措施。

图1. RealPCR PEDV RNA 检测预混液分析敏感性

IDEXX PEDV IgA 抗体 ELISA 检测试剂盒

在 PEDV 防控中的应用

在 PEDV 感染中,IgA 抗体对于仔猪的免疫保护是至关重要的,因粘膜 IgA 在对抗病毒的过程中发挥至关重要的作用[5,6]初乳中的 PEDV IgA 抗体能够为新生仔猪提供较强的免疫保护力IDEXX PEDV IgA 抗体 ELISA 检测试剂盒兼容血清和初乳(分娩2天内)样本,具有高敏感性和特异性,可检测经典毒株和变异毒株刺激所产生的 IgA 抗体。可应用于

  • 后备猪驯化后进群前血清转化情况的监测。

  • 监测生产前的母猪能够在初乳中提供足够的免疫保护力。

  • 定期监测产房中初乳和新生儿(24小时)血清,以确保初乳中母源抗体的充分转移。

  • 生长猪的常规监测(如断奶或转群后等应激事件发生不久后),以监控未检测到的 PEDV 血清学转化(防止病毒转移到别处)。

监控方案中样本和方法的选择及结果解读

PED 的防控是一个综合工程,需要良好的生物安全措施以防止病原侵入;需要做好猪群免疫接种工作以提升猪群抵抗力;需要加强饲养管理和卫生措施以降低环境中的病毒载量。以上工作均需要可靠的 PEDV 抗原检测和猪群抗体持续监测工具,以为 PEDV 的防控提供切实可靠的数据支撑和方案制定的参考依据。IDEXX PEDV 检测产品拥有高敏感性和特异性,是 PEDV 监控方案中的首选工具。

Reference:

[1] Gao Y , Kou Q , Ge X et al., 2013. Phylogenetic analysis of porcine epidemic diarrhea virus field strains prevailing recently in China[J]. Archives of Virology; 158(3):711-715.

[2] 2014. Investigation into the Role of Potentially Contaminated Feed as a Source of the First‐Detected Outbreaks of Porcine Epidemic Diarrhea in Canada[J]. Transboundary and Emerging Diseases;  61(5):397-410.

[3] Goyal S, 2014. Environmental stability of PEDV. NPB project #13-215. Interim report (1/21/2014).

[4] Torremorell M, 2015. Transmission of PEDV: what do we know so far? PEDV Preconference session Proceedings from the Annual Association of Swine Practitioners, Orlando, Florida. p5-6.

[5] Gimenez-Lirola LG, Yoon KJ et al,. 2015. Defining PEDV maternal humoral immunity and correlates of neonatal protection. NPB project # 12-264 Interim report (5/12/2015).

[6] Saif L, 2015. Lactogenic immunity and vaccines for porcine epidemic diarrhea virus (PEDV): revisiting transmissible ganstroenteritis virus (TGEV) vaccine concepts. Proceedings of the American Association of Swine Veterinarians, Orlando Florida. 403-406. 

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