![]() eccDNA早在20世纪60年代就被报道,但2015年才开始在全基因组水平上进行研究。2015年6月,Moller等在PANS发表了关于酵母eccDNA的研究,该文章在酿酒酵母(S. cerevisiae)全基因组上共发现1756个eccDNA(图1),这些eccDNA分布在不同位点上,覆盖基因组的23%,包括核糖体基因、转座子残体和一连串的重复基因(HXT6/7、ENA1/2/5和CUP1-1/ 2)等,eccDNA的长度在1~38 kb之间,并且80%的eccDNAs包含自主复制起始位点。根据酿酒酵母eccDNA在其基因组上分布的丰富性和普遍性,推断真核基因组中eccDNA很可能与癌症和其他人类遗传疾病中的CNV有关,另外eccDNA还可以通过复制、删除和分化推动进化过程。 ![]() 图1 eccDNA在酵母基因组上的分布 这篇文章不仅首次在全基因组水平上报道了eccDNA特性和功能,同时还提供了在全基因组水平上研究eccDNA的方法,后续的很多eccDNA-seq都源自此文章,下面就为大家解析此方法。 本文开发的Circle-Seq,是基于质粒提取、酶切消化和高通量测序的技术,根据线性DNA和环状DNA结构和化学性质上的差异,将裂解的细胞通过柱纯化、消除线性DNA和滚环扩增三个主要步骤富集eccDNA,结合高通量测序获取eccDNA的信息(图2)。 1、用玻璃微珠涡旋裂解酵母细胞,采用质粒提取试剂盒(Plasmid Mini AX;A&A Biotechnology),将细胞裂解液通过离子交换膜柱初步分离出环状DNA。为了验证实验的可靠性,文章将pBR322、pUC19、pUG72三种外源质粒作为spik in,分别按照:1:1、1:50、1:2,500的比例加入到细胞裂解液中,一起进行后续的操作。 2、使用限制性内切酶NotI 37℃处理17 h,把线粒体DNA线性化,并且把大的线性染色体DNA切断。用DNA外切酶消化线性DNA,获取纯的环状DNA; 3、采用ϕ29DNA聚合酶滚换扩增eccDNA; 4、超声打断处理后构建二代测序文库并进行测序。 ![]() 图2 Circle-Seq实验流程示意图 ![]() 三种外源质粒pBR322、pUC19、pUG72按照:1:1、1:50、1:2,500(plasmid:cell) 作为spik in加入细胞裂解液中,通过检测已知质粒验证Circle-Seq技术的有效性; ![]() 图3 外源质粒(已知环状DNA元件) ![]() 使用限制性内切酶NotI处理样本后,再利用外切酶消化线性DNA,富集eccDNA,并通过内参基因ACT1的定量PCR验证线性DNA的消除效率; ![]() 图4 核酶外切酶对线性DNA的消除效率 ![]() 从mapping到基因组的数据中筛选reads连续覆盖大于1kb的基因组区域,并且该区域内测序深度显著高于其他基因组区域,该处被认为存在eccDNA的区域(图6上);然后通过分析Junction Read(将一条read平均切割成三段,首尾不能同时mapping到参考基因组上的read)进一步鉴定eccDNA(图6下)。 ![]() ![]() 图6 生信分析鉴别eccDNA 除此之外,作者还单独发表了详细的protocl和视频,供研究人员参考和学习。 参考文献: [1] Andrew R. Morton et al., (2019), Functional Enhancers Shape Extrachromosomal Oncogene Amplifications, Cell, DOI: https:///10.1016/j.cell.2019.10.039 [2] Wu, S., Turner, K.M., Nguyen, N. et al. Circular ecDNA promotes accessible chromatin and high oncogene expression. Nature (2019) doi:10.1038/s41586-019-1763-5 [3] Koche, R.P., Rodriguez-Fos, E., Helmsauer, K. et al. Extrachromosomal circular DNA drives oncogenic genome remodeling in neuroblastoma. Nat Genet (2019) doi:10.1038/s41588-019-0547-z ![]() |
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