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易基因:上科大范国平教授团队RNA-BS揭示DNMT1在m5C修饰中的双重作用及其线粒体功能机制:Mol Cell|项目文章

 深圳易基因科技 2025-05-14

大家好,这里是专注表观组学十余年,领跑多组学科研服务的易基因。

表观遗传调控,包括DNA甲基化、RNA修饰和染色质重塑等,在神经退行性疾病中起重要作用。DNA甲基转移酶1(DNMT1)是一种已知的DNA甲基转移酶,主要负责维持DNA甲基化。然而DNMT1在非分裂细胞中的功能尚不清楚。此外,DNMT1的RFTS(replication focus targeting sequence )结构域突变(如A560V)与多种神经退行性疾病相关,但其分子机制尚未完全阐明。

近日,美国加州大学洛杉矶分校终身教授/上海科技大学免疫化学研究所特聘教授范国平课题组揭示了 DNMT1在调控DNA和RNA甲基化中的双重作用,特别是其通过RNA修饰调控线粒体功能的机制。研究发现,DNMT1能够与mRNA结合并促进其稳定性,并通过招募NSUN2蛋白来调节RNA的5-甲基胞嘧啶(m5C)甲基化。此外,研究还发现DNMT1的RFTS结构域突变(如A560V)会导致代谢基因的RNA甲基化和稳定性异常,进而引发线粒体功能障碍和神经退行性疾病。这些发现为理解DNMT1在神经系统疾病中的作用提供了新的视角,并为开发靶向RNA甲基化的治疗策略提供了理论基础。相关研究成果以《DNA methyltransferase 1 modulates mitochondrial function through bridging m5C RNA methylation》为题发表于《Molecular Cell》期刊。易基因科技为本研究提供m5C甲基化测序RNA-BS-seq技术服务

文章标题:DNA methyltransferase 1 modulates mitochondrial function through bridging m5C RNA methylation

发表时间:2025-05-05

发表期刊:Molecular Cell

影响因子:IF14.5/Q1

技术平台: RNA-BS-seq、RRBS、RNA-seq等(易基因金牌技术)

DNMT1是一种维持DNA甲基化的DNA甲基转移酶。其复制焦点靶向序列(RFTS)结构域中的点突变会导致晚发性神经退行性疾病,如常染色体显性小脑性共济失调-耳聋和嗜睡症(ADCA-DN)疾病。本研究首先验证了DNMT1具有结合mRNA转录本的功能,并通过招募NOP2/Sun RNA甲基转移酶2(NSUN2)来促进RNA m5C甲基化。同时,RNA m5C甲基化增强那些调节线粒体功能基因的RNA稳定性。当小鼠的DNMT1 RFTS结构域发生突变时,会引发异常的DNMT1-RNA相互作用,并显著提高部分代谢基因的m5C RNA甲基化和RNA稳定性。因此,代谢RNA转录本水平增加导致了累积性的氧化应激、线粒体功能障碍和神经症状。总体而言,本研究结果揭示了DNMT1在调节DNA和RNA甲基化中的双重作用,并进一步调节了线粒体功能,为DNMT1突变诱导的神经退行性疾病的发病机制提供了新见解。

图形摘要

研究方法

  1. 细胞培养和基因编辑

细胞培养:使用HeLa细胞、HEK293T细胞以及小鼠胚胎干细胞(ESCs),并在特定条件下培养。

基因编辑:通过CRISPR-Cas9技术构建了携带Dnmt1A560V突变的小鼠模型和细胞系。

2、动物模型和行为学测试

小鼠模型:构建Dnmt1A560V突变小鼠模型,用于研究DNMT1突变对神经系统的长期影响。

行为学测试:包括后肢抓握测试和旋转杆测试,评估小鼠的运动功能障碍。

3. RNA结合蛋白分析

增强型交联免疫沉淀测序(eCLIP-seq):鉴定DNMT1结合的mRNA转录本(DNMT1-bound mRNA transcripts,DBTs),发现DNMT1能够结合大量mRNA,并影响其稳定性。

4. RNA甲基化分析

RNA-BS-seq:分析RNA m5C甲基化水平,发现DNMT1能够通过招募NSUN2蛋白来调节RNA的m5C甲基化。

质谱分析(UHPLC-MRM-MS/MS):定量分析RNA甲基化水平,验证DNMT1对m5C甲基化的调控作用。

5. 蛋白质互作分析

Co-IP:检测DNMT1与NSUN2互作,并通过质谱分析鉴定DNMT1的互作蛋白。

等温滴定量热法(ITC):检测DNMT1与NSUN2之间的结合亲和力。

6. 基因表达和表观遗传分析

RNA-seq:分析基因表达变化,发现Dnmt1A560V突变导致代谢基因表达失调。

DNA甲基化测序(EM-seq和RRBS):分析DNA甲基化水平,发现突变对DNA甲基化影响较小,但对RNA甲基化影响显著。

7. 单细胞分析

scRNA-seq和snRNA-seq:分析神经组织中不同细胞类型的基因表达变化,揭示了广泛的氧化应激反应。

8. 代谢和线粒体功能分析

细胞能量代谢分析:评估细胞的氧气消耗率(OCR)和胞外酸化率(ECAR)。

线粒体DNA含量测定:通过qPCR分析线粒体DNA含量。

氧化应激和ATP含量分析:检测细胞中的氧化应激和ATP水平。

结果图形

(1)DNMT1直接与mRNA结合以增强其稳定性

DNMT1能够与mRNA结合,并通过增强RNA稳定性以调控基因表达。通过eCLIP-seq技术,研究者在HeLa细胞和HEK293T细胞中鉴定出大量DBTs,这些转录本主要分布在5’UTR区域。DNMT1的结合显著增强了这些mRNA的稳定性,且这种稳定性与RNA的细胞核质比和翻译效率相关。

图1:DNMT1与参与转录后调控的部分mRNA结合

(2)DNMT1通过招募NSUN2调控DBTs的m5C RNA甲基化

DNMT1能够通过招募NSUN2蛋白来调节RNA m5C甲基化。通过免疫共沉淀实验和质谱分析,研究者发现DNMT1与NSUN2之间存在直接相互作用,且这种相互作用部分依赖于RNA。RNA-BS-seq分析显示,DNMT1敲低(KD)的细胞中m5C水平显著降低,且这些位点与DBTs高度重叠。

图2:DNMT1对mRNA上m5C RNA甲基化的调控

  1. 鉴定DNMT1相互作用蛋白的FLAG免疫沉淀(IP)实验方案,随后进行质谱(MS)分析。

  2. 在IP-MS实验中,通过质谱检测到的DNMT1相互作用肽段与非特异性肽段(仅EGFP)的丰度差异。

  3. 在HeLa细胞中异位表达全长NSUN2和FLAG标签的DNMT1。随后使用抗FLAG抗体进行染色质裂解液的IP。然后用抗NSUN2和抗DNMT1抗体对IP蛋白进行免疫检测。

  4. DNMT1结构域和FLAG-DNMT1分离片段(F1–F4)的示意图。

  5. 共免疫沉淀检测FLAG-DNMT1分离片段(F1–F4)与NSUN2的相互作用。

  6. RNA-BS-seq热图显示在HeLa细胞中鉴定出的依赖DNMT1的m5C位点。

  7. DBTs与含有DNMT1依赖性m5C位点的基因之间的重叠。

  8. 由于DNMT1敲低(KD)处理而在HeLa细胞中稳定性发生变化的转录本的鉴定。

  9. DBTs与因DNMT1 KD而RNA稳定性降低的基因之间的重叠。

  10. 对照组(Ctrl)和DNMT1 KD HeLa细胞中DBTs(左侧)和非DBTs(右侧)的RNA稳定性条形图。

  11. 对照组(Ctrl)和DNMT1 KD HeLa细胞中所有DBTs的RNA稳定性总结。

  12. 对含有DNMT1依赖性m5C位点的DBTs进行GO分析。

  13. 基因组轨迹显示在对照组和DNMT1 KD HeLa细胞中Slam-seq信号在SPG7上的分布。

(3)Dnmt1A560V突变小鼠出现代谢和神经系统疾病

Dnmt1A560V突变小鼠表现出多种代谢和神经症状,包括体重下降、运动功能障碍和氧化应激增加。这些症状与线粒体功能障碍相关,且在突变小鼠的多个组织中观察到代谢基因的RNA甲基化和稳定性显著增加。

图3:Dnmt1A560V小鼠表现出代谢和神经紊乱

  1. Dnmt1结构域示意图及ADCA-DN A560V突变的位置。

  2. 部分纯合突变(Hom)小鼠表现出圆顶状头颅的脑积水(上)。整体大脑显示出扩大的大脑半球、受压的嗅球和下陷的大脑皮层(下)。

  3. 代表性大脑矢状面(上)和冠状面(下)切片显示,与野生型(WT)小鼠相比,Hom突变小鼠的侧脑室(LVs)极度扩张,且大脑皮层变薄。

  4. 本研究中鉴定出的WT、Het和Hom小鼠的总数和脑积水小鼠的数量。

(E-F) 雄性小鼠(每种基因型n=20)(E)和磁性小鼠(每种基因型n=20)(F)的生长曲线。

(G) 本研究中三种基因型的白内障发病率。

(H-I) 三种基因型小鼠的后肢抓握评分,雄性(H)和雌性(I)。

(J-K) 6个月大雄性(J)和雌性(K)小鼠的旋转杆性能测试。

(4)Dnmt1A560V突变显著增加代谢mRNA转录本水平

在Dnmt1A560V突变小鼠细胞中,代谢基因的mRNA转录本水平显著增加。这些转录本的增加与RNA m5C甲基化水平升高相关,表明DNMT1突变增强了RNA甲基化和稳定性。

图4:Dnmt1点突变导致部分代谢基因的转录去抑制

  1. hDNMT1蛋白对DNA的甲基转移酶活性的发光检测。

  2. 不同小鼠组织中基因体的平均甲基化水平。CB,小脑;Cor,皮层;M,月龄。

  3. 不同样本中高甲基化和低甲基化DMRs比例。

  4. 最接近DMRs基因与DBTs的重叠。

  5. 皮层中与DBT相关的DMRs数量的饼图。

  6. 皮层中与DBT相关的DMRs的甲基化差异(左)和相应的基因表达变化倍数(右)。

  7. 鉴定皮层中的差异表达基因(DEGs)。

  8. 所有与DBT相关的DEGs的相对表达(左)和皮层中相应TSS±2 kb区域的甲基化水平(右)。

  9. 对皮层中与DBT相关的DEGs的TSS±2kb区域中,纯合子(Hom)与野生型(WT)之间的DNA甲基化变化比例分析。

(5)稳定化的DNMT1结合mRNA参与线粒体调节

DNMT1结合的mRNA稳定性增加与线粒体功能调节密切相关。研究发现,这些mRNA的稳定性增加导致代谢基因表达水平升高,进而影响线粒体功能和氧化应激反应。

图5:与线粒体功能相关的DBTs的稳定性

  1. hDNMT1蛋白与RNA寡核苷酸R1结合的电泳迁移率变化分析(EMSA)。

  2. 与NSUN2和WT或突变型hDNMT1蛋白孵育的RNA寡核苷酸R1的单核苷酸中的RNA m5C含量。

  3. 小鼠皮层中DBTs的m5C位点的RNA甲基化水平热图。

  4. WT、杂合子(Het)和纯合子(Hom)神经前体细胞(NPCs)中DBTs的RNA稳定性。

(E–H) 不同组织和细胞中一致上调的DBTs热图。

(I-J) 纯合子Dnmt1A560V突变在皮层(I)和小脑(J)中诱导的指示基因特征变化基因集富集分析(GSEA)。

(6)失调的DNMT1结合mRNA导致线粒体功能障碍

Dnmt1A560V突变导致DNMT1结合的mRNA失调,进而引发线粒体功能障碍。研究发现,突变小鼠的线粒体呼吸功能下降,ATP合成减少,氧化应激增加,这些变化与代谢基因的RNA甲基化和稳定性异常相关。

图6:失调的DBTs导致线粒体功能障碍

  1. 热图显示不同组织和细胞中线粒体(mt)基因的倍数变化。

  2. 与线粒体功能相关的实验设计图。

(C-F) 条形图显示三种基因型成纤维细胞的线粒体呼吸(C)、ATP相关呼吸(D)、最大呼吸(E)和质子泄漏(F)。

(G-H) 三种基因型成纤维细胞的相对H2O2含量(G)和ATP含量(H)。

  1. 条形图显示成纤维细胞中线粒体DNA含量。

(J) 条形图显示三种基因型大脑皮层的线粒体复合体驱动的呼吸。

(K) 条形图显示大脑皮层的线粒体DNA含量。

(L) 12月龄小鼠禁食4小时后的血糖水平。

(7)单细胞分析揭示神经组织中广泛的氧化应激反应

通过单细胞RNA测序分析,研究发现Dnmt1A560V突变小鼠的神经组织中存在广泛的氧化应激反应。这些反应涉及多个细胞类型,包括少突胶质细胞和抑制性神经元,表明DNMT1突变对神经系统的广泛影响。

图7:单细胞分析揭示神经组织中广泛的氧化应激反应

  1. 单细胞文库制备示意图。

  2. 基于snRNA-seq的无偏倚UMAP可视化。

  3. 皮层中每个细胞亚型的标记物的点图。

  4. 细胞亚型中鉴定出的单细胞差异表达基因(scDEGs)数量及其与神经退行性相关基因的重叠条形图。

  5. scDEGs与神经退行性相关基因的重叠维恩图。

  6. 不同细胞亚型中Klf13b、Klf3a和Sqstm1表达的箱线图。

  7. 所有兴奋性神经元中鉴定出的scDEGs的GO分析。

  8. 基于UMAP可视化的视网膜中14669个细胞的9个聚类。

  9. 视网膜中scRNA-seq和bulk RNA-seq结果一致的差异表达基因(DEGs)的GO分析。在scRNA-seq和bulk RNA-seq中表现出一致变化趋势的DEGs被定义为一致DEGs。

  10. DNMT1调控的DBTs模型。突变导致DNMT1与RNA的相互作用增强,从而导致RNA过度抑制DNA甲基化(转录水平)和通过m5C RNA甲基化增强转录本稳定性。转录去抑制和DBTs的RNA甲基化共同驱动线粒体功能障碍,而ATP缺失和累积的氧化应激最终导致代谢和神经障碍。

易小结

本研究揭示了DNMT1在RNA修饰和线粒体功能调节中的新功能。DNMT1通过招募NSUN2调节RNA m5C甲基化,进而影响线粒体功能和神经退行性疾病发生。这些发现为开发靶向RNA甲基化的治疗策略提供了新的靶点,并为理解DNMT1在神经系统疾病中的作用提供了新视角。

RNA-BS-seq分析在本研究中的重要作用

RNA-BS-seq技术在本研究中发挥了关键作用。它不仅用于分析DNMT1和NSUN2在RNA甲基化中的作用,还揭示了Dnmt1A560V突变对RNA甲基化水平的影响。通过RNA-BS-seq,研究者能够单碱基分辨率检测RNA m5C甲基化水平,并鉴定出与DNMT1结合的mRNA转录本。这些数据为理解DNMT1在RNA修饰中的作用提供了重要依据。

关于易基因RNA m5C甲基化测序(RNA-BS)技术

m5C是RNA百余种修饰中研究较多的一种。m5C存在于tRNA上时,可以对翻译进行调节;存在于rRNA上时,可以对核糖体的生物合成进行质控;存在于mRNA上时,则可以影响mRNA的结构、稳定性及翻译过程。

易基因提供适用于不同科研需求的m5C甲基化测序技术:

  • 常规mRNA m5C甲基化测序(RNA-BS):
    mRNA分离后首先通过亚硫酸盐处理,非甲基化的C转变为U,m5C修饰的碱基保持不变,结合高通量测序,可以对RNA上的每一个C碱基修饰进行定位与定量。

  • 常规mRNA +lncRNA m5C甲基化测序(全转录组RNA-BS):

易基因科技建立的升级版m5C RNA甲基化测序服务,去除人rRNA后,剩余RNA经重亚硫酸盐处理后,结合高通量NGS策略,可在全转录组范围内单碱基分辨率地检测基因m5C甲基化修饰分布。

技术优势:

  • 高深度:超高深度重亚硫酸盐处理,检测准确性极高;

  • 高通量:结合高通量NGS,全转录组范围内检测;

  • 单碱基:单碱基分辨率,快速检测和分析RNA中的m5C。

  • 高准确:精确的检测mRNA等每一个C碱基的的修饰水平。

研究方向:

  • 与m6A甲基化类似,m5C甲基化已被证明与肿瘤、神经系统紊乱、代谢性疾病、病毒感染以及个体发育等密切相关。

  • 此外,RNA甲基化(m5C)与人类疾病密切相关,其功能涉及调控干细胞应激、细胞毒性应激、mRNA出核和植物细胞发育及基因表达等方面。

易基因提供全面的表观基因组学(DNA甲基化、DNA羟甲基化、cfDNA)和表观转录组学(m6A、m5C、m1A、m7G、ac4C、RNA与蛋白互作)、DNA与蛋白互作及染色质开放性技术方案(ChIP-seq、ATAC-seq),详询易基因:0755-28317900。

参考文献:

Wang et al., DNA methyltransferase 1 modulates mitochondrial function through bridging m5C RNA methylation,Molecular Cell (2025), https://doi.org/10.1016/j.molcel.2025.04.019

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