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基因编辑细胞实验,看这篇就够了!特别是在基因功能研究中,常常会用到CRISPR-Cas9技术,例如构建基因敲除、基因定点突变和基因敲入的细胞等,方便和高效的标签已经牢牢贴在它的身上。基因敲除(Knock out,KO)是基因功能研究中的“减法”套路,也就是基因功能缺失的研究思路,当目的基因被敲除,基因功能丧失后,所出现的细胞表型变化我们便...
细胞稳转株构建方法病毒法① 确定目标细胞系的相关信息,细胞的培养条件,细胞的增值速度,支原体污染情况;② 预实验确定MOI值,可通过查阅文献确定慢病毒在目标细胞系中的MOI值也可参考查阅得到的数据,设计梯度实验,摸索最适MOI;④ 细胞铺板,将需要的细胞量接种于合适的培养皿中;⑤ 细胞感染,通过接种的细胞量及预实验得来的MOI来计算...
基因敲除细胞系(株)鉴定方法?CRISPR/Cas9的作用过程主要分为两个阶段,第一阶段,捕获外源引入的序列(对于常用的CRISPR/cas9系统来说,第一阶段是sgRNA和Cas9蛋白结合);一般我们会选用蛋白法来做,直接合成sgRNA单链,和Cas9蛋白在体外孵育形成RNP复合物,在通过电转的形式将RNP复合物导入细胞中,这样既在较短时间内获得纯合敲除的单克隆...
对感染并筛选后的混合克隆稳转株细胞进行稀释培养,挑取单一细胞生长而成的细胞克隆,再进行扩大培养,以获得性状单一、表达稳定的细胞株:1)将细胞消化后接种于96孔板中,接种的细胞密度为1个/孔(可通过有限稀释的方法,也可通过流式分选);2)标记出具有单个细胞的孔等细胞扩增后用puro进行筛选;细胞计数设定首排的浓度,例如首孔设置10*...
处于对数生长期的细胞胰酶消化,完全培养基制成 3-5×104个/mL细胞悬液,并根据表1接种相应的细胞数到培养板中,继续培养保证感染时铺板量达到15-30%左右,按照预实验结果,参考表1更换感染培养基,加入最适病毒量进行感染。按照预实验确定的感染条件,使用感染液将细胞制成 3-5×105个/mL悬液,并根据表2接种相应的细胞数到培养板中。...
慢病毒介导的稳转株筛选原理。筛选流程示意图。实验原理:通过将外源DNA/shRNA克隆到带有某种抗性基因的载体上,重组载体转染至宿主细胞并整合到其染色体中,并随细胞分裂稳定传递,最后用载体中所含抗性基因进行筛选。抗性选择:常用的真核表达载体抗性筛选标志物有嘌呤霉素(puromycin)、新霉素(neomycin)和杀稻瘟菌素(blasticidin)。
而且考虑到细胞分裂会稀释质粒的量,所以起初转染的质粒拷贝数极高。稳定转染:是相对瞬时转染而言,进入细胞的质粒整合入细胞基因组中,并能随细胞分裂稳定传递下去。稳定转染并不是一种与瞬时转染不同的方法,只是对瞬时转染的细胞进行筛选,得到稳定整合的细胞株。质粒载体整合的位点并不是完全随机分布,依据不同的基因传递方法,呈现不同...
稳定表达细胞株的构建注意事项。1. 长期在目的细胞中研究基因功能,通过构建稳定株,可以大大降低频繁转染或者病毒包装的成本,也极大方便实验研究;3. 瞬转往往会引入极高拷贝数的表达,导致因为人为因素造成实验结果的不精确,构建稳定株可以帮助筛选拷贝数适量的细胞进行实验研究;5. 需要用细胞做动物实验的,比如裸鼠成瘤等,往往需要构建...
慢病毒过表达载体有基因容量限制,对于大于5k的基因,包装出慢病毒的概率很低,不建议包装病毒。慢病毒载体带有不同的标签,如果研究细胞定位,可以选择带荧光标签的慢病毒载体,比如带GFP/RFP等;感染期间请根据细胞生长的情况对细胞进行及时换液,以保证细胞良好的生长状态。反复冻融会降低病毒滴度,每次冻融会降低病毒滴度10%,因此,在病...
构建稳定表达细胞株的基本原理是将外源DNA克隆到具有某种抗性的载体上,载体被转染到宿主细胞并整合到宿主染色体中,用载体中所含抗性基因进行筛选,可得到稳定表达目的蛋白、或者稳定表达沉默特定基因的细胞株,即稳转株。而慢病毒几乎可以感染所有种类的细胞,并且在感染后容易整合到受感染细胞的基因组,进行长时间稳定表达,因此,慢病毒是...
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