作者:解螺旋.子非鱼 如需转载请注明来源:解螺旋·医生科研助手 Ngage目前仍没有人重复出结果,所以现在的基因编辑还是要靠老司机CRISPR出马。今天就说说CRISPR的实验操作流程。 那么为了让广大的科研汪们体验一把上帝造物的感觉,小鱼就将CRISPR的实验操作流程分享给大家。 举个栗子,以人的MET基因(GeneID: 4233)为例,可选的靶点如下: Note:1)一般建议构建2-3个靶点的基因敲除载体,再从中选出敲减效率较佳的靶点 其次,需要设计识别靶位点的一对DNA oligos。将靶位点的23至250bp的外显子序列输入到以下在线设计的工具(1、麻省理工学院的CRISPR Design:http://crispr./;2、德国癌症研究中心的E-Crisp:www.e-crisp.org/E-CRISP/designcrispr)的Input框中。而后,依据score的高低选取合适的Guide序列。根据酶切方式,选择合适接头,以Bbs1酶切为例:
将上述体系瞬时离心后,置于PCR仪中,95℃孵育3min,自然冷却20min后,链接至载体中。 1)测序评估 将PCR产物连接进T载体中,转化进DH5a细菌,随机挑取15-20个单菌落进行测序,评估目标片段被切割后碱基变化和切割效率。 2)PAGE胶检测突变体 PAGE胶检测突变体模式图 3)稀释法筛单克隆 如果选择的质粒中含有荧光标记,可用流式细胞术直接分选带有荧光的细胞;或者也可将转染的靶细胞从A1孔(细胞原液约1000个细胞/孔,数量根据细胞状态进行调整)至H1孔对半稀释,然后第一列再横向对半稀释,并用荧光显微镜观察细胞克隆生长情况,选择带有荧光的克隆,提取部分细胞的基因DNA进行PCR扩增,在琼脂糖凝胶电泳后将PCR产物直接送去测序。 至此,即可获得相应的基因敲除细胞。 |
|