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原发性智力障碍/发育迟缓患儿临床及遗传学分析

 岛山一丿哥 2018-05-06

选自中华实用儿科临床杂志, 2016,31(19)


智力障碍/发育迟缓(ID/DD)是指发育成熟以前(18岁以前)出现的认知和适应行为障碍。ID用于5岁以上儿童,此时智商(IQ)测定已比较可靠稳定;DD用于5岁以下的儿童,诊断标准为患儿存在2个或2个以上的发育能区的显著落后。国外报道ID/DD的患病率为1%~3%[1],我国智力残疾患病率为0.75%[2]。ID/DD异质性强,病因复杂,世界卫生组织(WHO) 2013年报道>50%的ID/DD病因不明,我国约2/3病因不明[3],这与我国ID/DD病因诊断不规范有关。

ID/DD患病率较高,且多数ID/DD尚无有效治疗办法,故明确病因诊断,做到一级预防尤为重要。本研究在既往神经发育障碍性疾病病因诊断流程[4]基础上建立了规范化ID/DD病因诊断流程(图1),按此流程对30例原发性ID/DD患儿进行临床及遗传学分析,以明确病因诊断。

图1

原发性ID/DD患儿病因诊断流程

Figure 1

Diagnosis flow process of etiology on idiopathic ID/DD

注:ID:智力障碍;DD:发育迟缓;MLPA:多重连接依赖的探针扩增技术

ID:intellectual disability;DD:development delay;MLPA:multiplex ligation-dependent probe amplification

图1

原发性ID/DD患儿病因诊断流程

Figure 1

Diagnosis flow process of etiology on idiopathic ID/DD

1 资料与方法

1.1 研究对象

选择2014年4月至2014年8月在北京大学第一医院儿科门诊就诊的30例(编号P1~P30) ID/DD患儿,男女各15例,中位年龄5岁5个月。纳入标准:(1)临床表现为智力运动发育落后;(2)无明确缺氧、中毒、中枢神经系统感染及头颅外伤病史。

1.2 方法

1.2.1 收集资料

收集临床资料,完善生化、代谢、神经影像学检查。本研究已获得医院医学伦理委员会批准,患儿家长均签署知情同意书。

1.2.2 采集标本

采集患儿及其家属外周静脉血各3~5 mL,采用FlexiGene DNA Kit (德国Qiagen公司)提取DNA,-80 ℃冰箱保存待用。部分外周血进行混合淋巴细胞培养,用于染色体核型分析。

1.2.3 染色体核型分析

应用常规G显带核型分析染色体结构及数目。

1.2.4 多重连接依赖的探针扩增技术(MLPA)

运用MLPA检测染色体亚端粒缺失/重复,检测试剂盒(P070、P036、P106)均购自荷兰MRC-Holland公司。

1.2.5 目标基因靶向捕获-高通量测序

参考数据库OMIM以及HGMD,检索并设计遗传性ID/DD相关的450个基因Panel,进行目标基因靶向捕获-高通量测序,筛查ID/DD相关单基因病。

1.2.6 染色体基因芯片分析(CMA)

应用CMA检测基因组拷贝数变异(CNVs),所用芯片为美国Affymetrix公司CytoScan HD芯片(与上海市儿科医学研究所和复旦大学生命科学学院合作完成)。

1.2.7 遗传变异致病性分析

对发现的遗传变异逐步进行多态性分析-文献/数据库检索-家系验证-蛋白结构影响预测等方法,判断变异的致病性可能。

2 结果

2.1 临床分析

30例患儿均表现智力和运动发育落后(表1),无继发性脑损伤病史。23例行发育评估提示轻到极重度发育落后。12例(40.0%,12/30例)伴颅面部外观畸形、通关掌、多指、房间隔缺损等先天畸形,8例(26.7%,8/30例)有注意力不集中、多动、脾气暴躁、孤独症样表现等精神行为异常,4例(13.3%,4/30例)有惊厥,2例(6.7%,2/30例)视力差,2例(6.7%,2/30例)有惊跳反射,1例(3.3%,1/30例)有阳性家族史,母亲处于智力障碍边缘状态。21例行生化、代谢等检查,均未见明显异常;28例行头颅MRI检查,15例(53.6%,15/28例)有脑白质、大脑皮质、胼胝体发育不良、脑室扩大等异常发现。30例均为原发性ID/DD,1例(P4大头畸形,前额、下颌突出,耳位高,眼裂下斜,生长过速,身材细长)临床诊断Sotos综合征,29例病因诊断不明确。

表1

智力障碍/发育迟缓患儿30例临床特点

Table 1

Clinical characteristics of 30 patients with intellectual disability/development delay

表1

智力障碍/发育迟缓患儿30例临床特点

2.2 遗传学分析

30例ID/DD患儿中,29例(P1~P29)发现遗传变异,遗传变异检出率96.7%(29/30例) (数据未列出),8例(P1、P2、P4~P9)变异为致病性(表2),病因诊断明确,诊断阳性率26.7%(8/30例)。22例行染色体核型分析,1例(P1)发现异常:46,XX,del(22)(q13.3),染色体核型诊断阳性率为4.5%(1/22例)。30例行MLPA,2例(P1、P2)发现染色体亚端粒缺失:P1 22qter del,P2 15qter del,其父母该区域均未见异常;1例(P3)发现染色体亚端粒重复:7qter dup,遗传自其表型正常的父亲;余27例未见异常;2例(P1、P2)病因诊断明确,MLPA诊断阳性率为6.7%(2/30例)。P4行荧光原位杂交(FISH)未发现可导致Sotos综合征的5q35区域的缺失/重复。30例行目标基因靶向捕获-高通量测序,28例(P1~P9,P11~P29)存在ID/DD相关基因变异,4例(P4~P7)变异为致病性突变,病因诊断明确,基因Panel诊断阳性率为13.3%(4/30例):P4 NFIX c.613C>T(p.Q205X)杂合突变,父母此位点为野生型(图2A),Q205X不属于多态性改变,不同物种间氨基酸序列比对提示p.Q205位点氨基酸保守性好(图2B),p.Q205X为截短突变预测会影响蛋白质结构,提示突变有害;P5 DHCR7 c.901C>A(p.H301N),c.1376G>A(p.W459X)复合杂合突变,2个变异位点分别遗传自父亲、母亲;P6、P7分别为UPF3B c.1034G>A(p.R345H)和DLG3 c.128G>T(p.G43V)半合子突变,均遗传自其杂合子的母亲。7例行CMA,4例(P8~P11)发现CNVs:P8 chr11:123794665-127550567单拷贝增加,P9:chr15:56938298-61806136杂合缺失(图3),其父母该区域均未见异常;P10:chr11:23527905-25050275杂合缺失,P11 chr5:108996132-109172348杂合缺失,均遗传自其表型正常的母亲,2例(P8、P9)病因诊断明确,CMA诊断阳性率为28.6%(2/7例)。

图2

P4家系NFIX Sanger测序图及NFIX p.Q205位点氨基酸保守性

Figure 2

Sanger sequencing of NFIX for P4 family and conservation of anion acid residue at NFIX p.Q205

注:A:P4 NFIX c.613C>T杂合突变,P4父亲、母亲NFIX c.613C为野生型(箭头所示);B:NFIX p.Q205位点在不同物种间氨基酸保守性好(数据来自UCSC Genome Browser数据库)

A:P4 NFIX c.613C>T hete-rozygous mutation,and his parents NFIX c.613C were wild type(arrow);B:NFIX p.Q205 was conserved across different species (data from UCSC Genome Browser database)

图2

P4家系NFIX Sanger测序图及NFIX p.Q205位点氨基酸保守性

Figure 2

Sanger sequencing of NFIX for P4 family and conservation of anion acid residue at NFIX p.Q205

图3

P8家系染色体基因芯片分析

Figure 3

Chromosomal microarray analysis for P8 family

注:P8:chr11:123794665-127550567(hg19),拷贝数变异大小:3 756 kb,CN State:3,染色体上的位置:11q24.1-24.2;P8父亲、母亲该区域均未见异常

P8 with a duplication of chr11:123794665-127550567(3 756 kb) (hg19),mapping to 11q24.1-24.2,CN=3;his father and mother were normal in the same area

图3

P8家系染色体基因芯片分析

Figure 3

Chromosomal microarray analysis for P8 family

表2

智力障碍/发育迟缓患儿30例遗传学分析

Table 2

Genetic analysis of 30 patients with intellectual disability/development delay

表2

智力障碍/发育迟缓患儿30例遗传学分析


3 讨论

ID/DD病因复杂,外在环境因素约占20%,内在遗传因素约占2/3[5]。国外约50%病因诊断明确,国内仅30%病因明确[3]。国内既往相关研究多运用单一的遗传学检测方法,本研究按照规范流程运用多种检测方法对可能的病因进行综合判断,提高病因诊断率,但病例数较少,仅7例进行CMA检测,总诊断阳性率可能偏低,需扩大样本量进一步验证。

30例原发性ID/DD中,先天畸形(40.0%,12/30例)和精神行为异常(26.7%,8/30例)较常见,与既往文献数据基本相符[6]。少数患儿有惊厥(13.3%,4/30例)、视力差(6.7%,2/30例)、惊跳反射(6.7%,2/30例)。1例(P4)临床诊断为Sotos综合征,29例病因诊断不明确。

经遗传学检测,96.7%(29/30例)发现遗传变异,26.7%(8/30例)变异有致病性,发现4种基因的5种未报道的新突变:NFIX c.613C>T (p.Q205X)(P4),DHCR7 c.1376G>A(p.W459X)与c.901C>A(p.H301N)(P5),UPF3B c.1034G>A(p.R345H)(P6),DLG3 c.128G>T(p.G43V)(P7),确诊1例22q13.3微缺失综合征(P1)、1例Angelman综合征(P2)、1例Sotos综合征2型(P4)、1例Smith-Lemli-Opitz综合征(P5)、1例11q24.1q24.2微重复综合征(P8)、1例15q21.3q22.2微缺失综合征(P9)及2例X连锁ID 2例(P6、P7)。

P4临床诊断为Sotos综合征。90%的Sotos综合征是由NSD1单倍体剂量不足(5q35微缺失或NSD1点突变)引起的,为Sotos综合征1型[7]。2010年发现NFIX突变可以导致Sotos综合征样表现(Sotos-like),后命名为Sotos综合征2型(MIM #614753),目前仅6例NFIX点突变导致Sotos综合征2型的病例被报道[8]。P4 FISH检测及靶向二代测序未发现包含NSD1基因的5q35区域的缺失/重复或NSD1点突变,发现NFIX c.613C>T(p.Q205X)新生杂合无义突变,生物学分析提示突变有害,结合患儿临床表现,P4 Sotos综合征2型基因诊断明确。此病例为国内首次报道NFIX突变导致Sotos综合征2型。

P8中度发育迟缓,视力差,语言发育明显延迟,有高热惊厥史,CMA发现chr11:123794665-127550567区域3756Kb单拷贝增加,父母此区域未见异常。chr11:123794665-127550567位于11q24.1-24.2,此区域包含多个与脑发育相关的OMIM基因,临床可表现为发育畸形、智力障碍。DECIPHER数据库(https://decipher.sanger.ac.uk/)中有3个患者(#300792、#248786、#255590)11号染色体的重复区域与P12有重叠,临床主要表现为发育迟缓、发育畸形等,综上考虑患儿CNVs有致病意义。

本研究ID/DD总病因诊断率为26.7%(8/30例)。染色体核型诊断阳性率为4.5%(1/22例),低于国外报道的9%~36%[1],可能与我国染色体核型分辨率较低有关。MLPA、基因Panel诊断阳性率分别为6.7%(2/30例)和13.3%(4/30例),与文献报道的4%~10%[9,10]和11%~25%[11,12,13]基本相符。CMA诊断阳性率为28.6%(2/7例),高于文献报道的平均诊断阳性率12%[1,14],可能与芯片不同及样本量较少有关。

本研究按照病因学诊断流程对30例原发性ID/DD患儿进行临床及遗传学分析,明确8例患儿的病因学诊断,发现4种基因的5种未报道的新突变,扩大了NFIX、DHCR7、UPF3B、DLG3基因突变谱,同时在国内首次报道1例NFIX突变导致Sotos综合征2型。染色体核型、MLPA、目标基因靶向捕获-高通量测序、CMA的诊断阳性率分别为4.5%(1/22例)、6.7%(2/30例)、13.3%(4/30例)、28.6%(2/7例)。规范化的病因学诊断流程有助于提高原发性ID/DD的病因诊断率。


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