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TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

 starsea1128 2019-08-01

  (2018-01-25 10:06:49)

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qpcr

 

mirna

 

taqman


1. TaqMan探针检测MiRNA的原理是什么?

答:在PCR的过程中,TaqMan MGB探针会特异性地结合到与其互补的序列上,这个序列在下游引物与下游引物之间,如下所示:

 TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

图例如下:

 TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

在复制时,,上游引物延伸出来的片段就会与TaqMan MGB探针接触,如下所示:

TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

其中,上游引物上的DNA聚合酶(橙色圆圈,带P的那个)会切除掉与序列互补的探针,如下所示:

 TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

被切掉的报告染料(标记为R的青色圆圈,染料为FAM)就会从探针上游离出来,发光。报告基因在探针上不发光是因为探针上有一个淬灭基因,即NFQ,它能与R中和,使R不发光,但当R游离出来后,R就能发生了。此外,MGB的作用是,一是在不增加探针长度的条件下,提高解链温度(Tm),二是缩短探针的长度。而探针的3’端是被阻断的,因此探针的3’末端并不会发生延伸。

注:在做实验时,特定的miRNA Taqman需要订制,订制与合成时间约为1个月。

2. 最近要做miRNA的定量检测,使用的方法为TaqMan探针,手中的所有试剂如下所示:

①TaqMan(TM) MicroRNA Reverse Transcription Kit(货号:4366596);②Taqman Advanced miRNA cDNA Synthesis Kit(货号:A28007);③TaqMan™ Fast Advanced Master Mix(货号:4444556);④TaqMan Advanced miRNA Assays(针对miRNA-21-5p)。

3. 在利用Taqman探针检测miRNA时,需要哪些试剂盒?

答:需要三个试剂盒,第一个是Taqman Advanced miRNA cDNA Synthesis Kit(货号:A28007),这个试剂盒用于反转录RNA,生成的cDNA用于下一步的qPCR。第二个试剂盒是TaqMan™ Fast Advanced Master Mix(货号:4444556),第三个试剂盒是TaqMan Advanced miRNA Assays,第二个试剂盒就是qPCR的预混液,它需要与第三个试剂盒配合使用,第三个试剂盒里面只有一管试剂,其主要成分是包含某个miRNA的特异性上、下游引物和FAM标记的MGB探针的混合物,用于miRNA的定量qPCR检测。

4. 在做qPCR时,通常需要几个重复?

答:通常需要3个生物学重复,每个生物学重复又需要3个技术重复。生物学重复是指我要取3只小鼠的样本,技术重复是指,对一个样本来说,检测3个孔,这是避免操作上导致的误差而设计的重复实验,其实就是复孔。

除了研究的样本外,还要有阴性对照孔,其中阴性对照孔又分为NTC与NRC,NTC(No-Template Control),没有模板的对照,用来验证实验材料是否具有污染。一般以水作为模板,如果有荧光反应,说明实验室有核酸污染发生。这些污染来自于:水不纯,不合格的试剂含有内源DNA,引物污染,实验室器材污染,气溶胶污染等等,需要使用RNase清除剂和RNase抑制剂。气溶胶污染是最不容易发现的,想象一下你的实验室就像雾霾,空气中悬浮着各种核酸。

NRT (No-Reverse Transcriptase),没有反转录的对照,是未经反转录的RNA作为阴性对照,这是对gDNA(即基因组DNA)残留的控制。在做基因表达时,通过检测反转录后的cDNA量来检测RNA的量,那么如果在提纯RNA时有gDNA的残留,就会造成实验结果的误差,因为实际得到的结果是gDNA和cDNA的总体水平而不仅仅是cDNA的,需要在提取RNA的时候彻底去除gDNA。

因此,在进行某个基因检测时,如果实验的干预条件只有一个,则需要个孔,分别为:实验组3个生物学重复,每个生物学样本3个技术重复,再加上内参基因,再乘以2(对照组),一共是36个孔(这里没有计算NRT与NTC),如下所示:

 TaqMan探针检测miRNA表达笔记(一)

5. 如何计算qPCR的结果?

答:对于qPCR的结果,通常是采用ΔΔCt的方法(相对表达法,非绝对表达法),方法如下所示:

用内参基因的Ct值均一化目标基因的Ct值,例如

第一步:均一化:

ΔCt(实验组的目的基因)=Ct(实验组的目的基因)-Ct(实验组的内参基因)

ΔCt(对照组的目的基因)=Ct(对照组的目的基因)-Ct(对照组的内参基因)

第二步:与对照组相比

ΔΔCt(实验组的目的基因)=ΔCt(实验组的目的基因)-ΔCt(对照组的目的基因)

第三步:计算表达水平:

FC(fold change,实验组目的基因的表达倍数)=2-ΔΔCt

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