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【NGS workshop】听说肿瘤NGS检测很火?原理又有多少人知道?

 刘得光3p6n6zqq 2021-12-29
 
前言

二代测序技术(Next-generation sequencing, NGS)具有高通量、低成本、数据稳定可靠等优点,其在临床精准诊治领域的贡献巨大。科学家通过NGS技术研究发现成百上千与肿瘤相关基因,其中很多肿瘤驱动基因成为治疗的靶点。同时,NGS有发现未知基因变异的优势,可以帮助确定肿瘤的原发部位,通过检测细胞的核酸特征判定是原发癌还是继发癌,进而更好的制定治疗策略。

NGS领域经过了十年左右的发展成熟,逐渐形成以Illumina为领头羊,Thermo Fisher紧追其后的市场格局。Illumina的NGS产品带动测序成本下降,其平台具有高通量、低错误率、低成本、应用范围广等优点。而Thermo Fisher家的头牌产品Ion Torrent系列有测序时间短,但数据产出低,且如果真实序列上同一碱基连续出现,则检测出的碱基数量会有误差等特点。这些技术问题一定程度上限制了Ion Torrent在肿瘤临床精准诊治中的推广应用。

下文将以Illumina Miseq平台为例,给大家介绍NGS技术的基本流程及相关原理:文库构建、DNA簇生成(DNA cluster)边合成边测序(Sequencing by Synthesis,SBS)等

图片“听起来有点拗口,接下来逐步为大家讲解。找小板凳坐好,马上开始我的表演!”

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    文库构建属于上机前样本处理的过程,目的在于将待测的核酸样本转化为测序仪可识别的序列,这种序列有2个特点:(1)线性双链,片段大小在200-300bp左右;(2)含有工具序列,如测序引物结合区、index(区分样本的标签)及P5/P7序列。

以组织样本为例,该流程主要涉及核酸的片段化→末端修复及加A加接头Pre-PCR→杂交捕获Post-PCR→文库等(如图1所示)。其中,杂交捕获是一种常用的目的片段富集策略,并且我们一般在Post-PCR中给目的片段加上index及P5/P7序列。由图示可知,接头序列即为测序引物结合区,此外,接头序列在文库构建过程中,也用作两次PCR引物的结合区。

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图1. 文库构建流程图(来源:illumina官网)

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DNA簇生成的目的在于,将文库片段结合到测序芯片(FlowCell)上,并且通过桥式PCR扩增,达到信号放大的作用。如图2所示,一张Miseq的FlowCell,仅约两指宽,芯片板内刻有微流通道(Lane),且其内表面做了专门的化学修饰,布满与P7/P5序列互补的oligo序列,可使文库单链分子通过簇生成结合上去。

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图2 簇生成过程示意图(来源:illumina官网)

桥式PCR技术涉及的具体化学过程如下:文库DNA变性后成单链分子,将其加入FlowCell的Lane中,此时其内表面对应的oligo进行退火,单链文库分子得以杂交结合到FlowCell上(图3-1)。以杂交后的DNA分子为模板,oligo为引物,在聚合酶作用下合成与FlowCell锚定的第一链(图3-2)。之后进行第一次变性,模板链被去除,仅留下新合成的第一链。以合成的第一链为桥式PCR起始模板。模板与FlowCell上相邻的oligo序列通过碱基互补配对形成“桥”(图3-3),以另一端oligo序列为引物等温扩增,形成两条互补链(图3-4)。之后经过变性剂复性进行第二轮桥式PCR(图3-5/3-6)。桥式PCR一般需要35个循环才能够达到足够拷贝数(图3-7/3-8)。一个单一的分子在FlowCell上被扩增形成一个包含单一种类分子的信号单元—簇(Cluster)。在后续谈及的边合成边测序过程中,每个Cluster作为信号收集照片上的一个数据采集单元。

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图3 桥式PCR原理示意图

图3 桥式PCR原理示意图(来源:illumina官网)

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