分享

图解原代细胞 | 第5期. 一文搞定肺组织原代成纤维细胞

 新用户4064dVjo 2024-04-25 发布于北京

在前面的推送中,我们一起学习了脾脏T细胞肺动脉平滑肌细胞骨髓BMDM(详见基础科研系列合集)提取方法和特性,还提及原代细胞提取的共性要点,今天我们将进一步学习肺组织中另一类重要的细胞——成纤维细胞,利用原代细胞常用的提取方法:酶解法和组织贴壁法实现肺原代成纤维细胞的成功提取与培养。

准备工作

试剂和器械

高糖 DMEM培养基( Gibco) ,胎牛血清( FBS,Gibco) ,磷酸缓冲盐溶液( PBS,Gibco) ,Hank’s 平衡盐溶液(HBSS,Gibco),0.25%胰蛋白酶( Gibco, 25200-056),胶原酶/分离酶 (Roche, 10269638001),DMSO( Sigma) ,75%酒精,T25培养瓶,10cm培养皿,移液器,枪头,灭菌的取材器械

操作流程

取材、分离培养、传代、鉴定

1.

小鼠肺组织的取材

(所有步骤均应在无菌条件下进行)

(1)脱椎处死小鼠,用75%酒精浸泡喷洒小鼠体表,从颈部打开胸腔(避免与腹腔相通,减少污染风险),暴露肺组织。

(2)快速取出肺组织,放入装有2ml HBSS 的10 cm 培养皿中,去除周围结缔组织,加入适量 HBSS冲洗 2-3 遍,至肺组织微微发白以减少肺组织中的红细胞。

2.

原代成纤维细胞的分离培养

(酶解法和组织贴壁法)

2.1

酶解法:培养周期短,操作步骤简单

(1)将肺组织置于新的培养皿中,用眼科剪将肺组织充分剪碎至呈糊状(如图1)。

图1 组织剪碎成糊状[1]

(2)将剪碎的组织转移至1.5ml ep管,每50mg肺组织加入0.5ml 浓度为1mg/ml胶原酶/分离酶(Roche, 10269638001),确保组织充分解离;

(3)在37℃、 CO2培养箱中,解离30 分钟。

(4)室温下1000 x g 离心5分钟,去上清。

(5)加入1ml HBSS 洗涤细胞,室温下1000 x g 离心5分钟,去上清。

(6)每50mg肺组织加入0.5ml 0.25%胰蛋白酶再次酶解细胞,37℃培养箱孵育30分钟。

(7)室温下1000 x g 离心5分钟,去上清。

(8)用DMEM培养基重悬细胞,6孔板铺板,置于 5% CO2 、37 ℃的培养箱中培养。

图2 显微镜下观测到6孔板中的成纤维细胞[1]

2.2

组织贴壁法:培养周期长,但获得的原代细胞相对更纯

(1)将肺组织转移至10cm 培养皿中剪碎至糊状,加入 200μL胎牛血清,混匀。

(2)用 1 mL 一次性无菌吸管吸取肺组织均匀铺于 T25培养瓶中,此过程应将肺组织碎块充分分离铺匀,每个组织块之间间隔约1 mm(每只小鼠肺组织可接种 2-3个 T25培养瓶)。

图3 肺组织块均匀铺于 T25 培养瓶示意图[2]

(3)(关键步骤:组织贴片牢固贴壁)

将培养瓶缓慢翻转倒置(组织贴壁面朝上),向培养瓶中加入 2 mL含 12%-15%的 FBS的 DMEM培养基,置于培养箱中干贴壁 2 h(此步骤防止组织片缺水干燥)

(4)干贴壁2 h后,缓慢翻转正置培养瓶,此时培养基与组织块浅浅接触。

(5)置于 5% CO2 、37 ℃的培养箱中培养,每 2 天更换培养基,操作应缓慢,避免组织块漂浮,连续培养7-9天(部分肺组织细胞生长缓慢,可适当延长培养时间)

(6)7-9 天后,可观察到组织块周围有大量成纤维细胞爬出。

图4 大量原代成纤维细胞从组织团块中爬出[3]

4.

原代成纤维的传代

(1)第一次传代时间:酶解法获得的成纤维细胞培养到70-90%密度;组织贴壁法孵育7-9天后的细胞进行第一次传代。

(2)传代方法:弃去培养瓶中的旧培养基,PBS洗1-2次,胰蛋白酶消化40-60秒,1:2传代。置于5% CO2 、37 ℃的培养箱继续培养。

(3)传代次数:第一次传代后,每2-4天根据细胞密度换液或1:2传代 ,建议选取2-10代的原代细胞用于后续实验或冻存。

5.

原代成纤维的鉴定

(1)细胞形态:镜下观察成纤维细胞成长索形、条索状。
(2)免疫荧光:

图5 鬼笔环肽(Phalloidin )或α-平滑肌肌动蛋白((alpha-SMA)免疫荧光染色为阳性[3]

(3)qPCR鉴定:

图6 qPCR 检测肺成纤维细胞相关基因的表达[3]

以上就是今天的分享内容啦,大家可以根据实验需求选取耗时更短的酶解法或纯度更高的贴壁法,按照上述步骤操作就能获得理想的原代成纤维细胞!

大家对于推送内容有任何问题或建议可以在公众号菜单栏“更多--读者的话”栏目中提出,我们会尽快回复!

参考文献:

[1] EDELMAN B L, REDENTE E F. Isolation and Characterization of Mouse Fibroblasts[M/OL]//ALPER S, JANSSEN W J. Lung Innate Immunity and Inflammation: Methods and Protocols. New York, NY: Springer, 2018: 59-67[2024-04-24]. 
[2] 改良组织法高效分离纯化成年小鼠肺成纤维细胞--《中华中医药学刊》2018年12期[EB/OL]. [2024-04-24].
[3] FUENTES-MATEOS R, SANTOS E, FERNÁNDEZ-MEDARDE A. Optimized Protocol for Isolation and Culture of Murine Neonatal Primary Lung Fibroblasts[J/OL]. Methods and Protocols, 2023, 6(1): 14[2024-04-24]. 
[4] 王嘉陵邓佳慧 肖军花. 成年小鼠肺成纤维细胞的分离纯化及原代培养[J/OL]. 基础医学与临床, 2012, 32(6): 713[2024-04-24]. 
[5] Establishing Primary Adult Fibroblast Cultures From Rodents[EB/OL]. [2024-04-24]. 

让医学科研有迹可循

MASCU


    转藏 分享 献花(0

    0条评论

    发表

    请遵守用户 评论公约

    类似文章 更多