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实验十二 观察细胞的减数分裂P21 1、目的要求：通过观察蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，识别减数分裂不同阶段的染色体的形态、位置和数目，加深对减数分裂过程的理解。 2、材料用具：蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，显微镜。 3、方法步骤： （1）在低倍镜下观察蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，识别初级精母细胞、次级精母细 胞和精细胞。 （2）先在低倍镜下依次找到减数第一次分裂中期、后期和减数第二次分裂中期、后期的细胞，再在高倍镜下仔细观察染色体的形态、位置和数目。 4、讨论： （1）如何判断视野中的一个细胞是处于减数第一次分裂还是减数第二次分裂？（查看《五年高考三年模拟》P68） （2）减数第一次分裂与减数第二次分裂相比，中期细胞中的染色体的不同点是什么？末期呢？
实验十三 低温诱导染色体加倍P88 1、原理：用低温处理植物分生组织细胞，能够抑制纺锤体的形成，以致影响染色体被拉向两极，细胞也不能分裂成两个子细胞，于是，植物细胞染色体数目发生变化。 2、方法步骤： （1）洋葱长出约1cm左右的不定根时，放入冰箱的低温室内（4℃），诱导培养36h。 （2）剪取诱导处理的根尖约0.5~1cm，放入卡诺氏液中浸泡0.5~1 h，以固定细胞的形态， 然后用体积分数为95%的酒精冲洗2次。 （3）制作装片：解离→漂洗→染色→制片（过程同观察细胞的有丝分裂的制片方法一样） （4）观察，比较:视野中既有正常的二倍体细胞,也有染色体数目发生改变的细胞. 3、讨论：秋水仙素与低温都能诱导染色体数目加倍，这两种方法在原理上有什么相似之处？
实验十四 调查常见的人类遗传病P91 2 要求：1 调查的群体应足够大；2 选取群体中发病率较高的单基因遗传病。如红绿色盲、白化病、高度近视(600度以上)等.3 如果调查某病的遗传方式，则要对患病的家族群体进行调查统计。 2 方法:保证调查的群体足够大， 分组调查,汇总数据,统一计算. 步骤： 组织问题调查小组→ 确定课题→ 分头调查研究→ 撰写调查报告→ 汇报、交流调查结果。 3、计算公式：某种遗传病的发病率= × 100% 4、讨论: 所调查的遗传病的遗传方式, 发病率是否与有关资料相符, 分析原因. 实验十五 探究植物生长调节剂对扦插枝条生根的作用P51 原理：植物插条经植物生长调节剂处理后，对植物插条的生根情况有很大影响，而且用不同浓度、不同时间处理其影响程度亦不同。其影响存在一个最适浓度、在此浓度下插条生根数量最多、生长最快。 1、常用的生长素类似物:NAA(萘乙酸), 2,4-D, IPA(苯乙酸). IBA(吲哚丁酸)等 2 步骤：（1）选择插条：以1年生苗木最好（1年或2年生枝条形成层细胞分裂能力强、发育快、易成活） （2）扦插枝条的处理：枝条的形态学上端为平面，下端削成斜面，这样在扦插后可以增加吸收水分的面积，促进成活。每一枝条留3-4个芽，所选枝条芽数尽量一样多。 （3）生长调节剂的使用 ①浸泡法：把插条的基部浸泡在配置好的溶液中，深约3cm，处理几小时或一天。处理完毕就可以扦插了。这种处理方法要求溶液的浓度较低，并且最好是在遮荫和空气湿度较高的地方进行处理。 ②沾蘸法：把插条的基部在浓度较高的药液中蘸一下（约5s），深约1.5cm即可。 3、预实验：先设计一组浓度梯度较大的实验进行探索,在此基础上设计细致的实验. 4、实验设计的几项原则: ①单一变量原则(只有溶液的浓度不同)；②等量原则(控制无关变量,即除溶液的浓度不同外,其他条件都相同)；③重复原则(每一浓度处理3~5段枝条) ； ④对照原则（相互对照、空白对照）；⑤科学性原则 预实验：在进行科学研究时，有时需要在正式实验前先做一个预实验。这样可以为进一步的实验摸索条件，也可以检验实验设计的科学 性和可行性，以免由于设计不周，盲目开展实验而造成人力，物力和财力的浪费。预实验也必须像正式的实验一样认真进行。
实验十六 模拟尿糖的检测 目的：学会尿糖的检测方法、检查“尿样”中是否含有葡萄糖。 1、取样：正常人的尿液和糖尿病患者的尿液 2、检测方法：斐林试剂（水浴加热）或班氏试剂或尿糖试纸 3、结果：（用斐林试剂检测）试管内发生出现砖红色沉淀的是糖尿病患者的尿液，未出现砖红色沉淀的是正常人的尿液。 4、分析：因为糖尿病患者的尿液中含有还原糖，与斐林试剂发生反应产生砖红色沉淀，而正常人尿液中无还原糖，所以没有发生反应。 班氏试剂：①在40ML水中加入85ML柠檬酸钠和50g无水碳酸钠，形成柠檬酸钠――Na2CO3溶液。②在50ML热水中加入8.5g无水CuSO4制成CuSO4溶液，③把CuSO4溶液倒入柠檬酸钠――Na2CO3溶液中，边加边搅拌，如有沉淀可过滤。 班氏试剂同斐林试剂一样，同还原糖反应，生成砖红色沉淀。 优点：1，班氏试剂可长期保存，不必现配现用，柠檬酸钠――Na2CO3为缓冲对，产生的OH－有限，2，碱性比斐林试剂弱，灵敏度高，干扰因素少，实际应用更多。
实验十七 探究培养液中酵母菌数量的动态变化P68 原理：在含糖的液体培养基中酵母菌繁殖很快，迅速形成一个封闭容器内的酵母菌种群，通过细胞计数可以测定封闭容器内的酵母菌种群随时间而发生的数量变化。 1、培养酵母菌（温度、氧气、培养液）：可用液体培养基培养 2、计数：血球计数板(2mm×2mm方格,培养液厚0.1mm) 3、推导计算 4、讨论：根据7天所统计的酵母菌种群数量画出酵母菌种群数量的增长曲线；推测影响影响酵母菌种群数量变化的因素。 探究原理：酵母菌可以用液体培养基来培养。培养基中酵母菌种群的增长情况与培养液中的成分、空闻、pH、温度等因素有关。我们可以根据培养液中的酵母菌数量和时间为坐标轴做曲线，从而掌握酵母菌的种群数量变化情况。 探究目的：初步学会酵母菌等微生物的计数以及种群数量变化曲线的绘制。 探究步骤： (1)将10 mL无菌马铃薯培养液或肉汤培养液加入试管中。 (2)将酵母菌接种入试管中的培养液。 ， (3)将试管放在25℃条件下培养。 （4)每天取样计数酵母菌数量： (5)分析数据，。画出曲线 注意：①我们测定的酵母菌种群数量是在恒定容积的培养基中培养测定的，与自然界中的数量变化有差异。 ②在进行酵母菌计数时，由于酵母菌是单细胞生物，因此必须在显微镜下计数，且我们不能正确计数个数，只能估算。 ③从试管中吸出培养液进行计数前，需将试管轻轻振荡几次，目的是使培养液中的酵母菌均匀分布，以保证估算的正确性，减少误差。 ④每天计数酵母菌数量的时间 要固定。 ⑤计数时，对于压在小方格界线上的酵母菌应只计数相邻两边及其顶角的酵母菌。 ⑥结果的记录最好以计录表来记录
表达和交流 (1)根据实验数据可得图4—1 7所示的增长曲线
⑵增长曲线的总趋势是先增加再降低。原因是在开始时培养液的营养充足，空间充裕，条件适宜，因此酵母菌大量繁殖，种群数量剧增，随着酵母菌数量的不断增多，营养消耗，pH变化等，使生存条件恶化，酵母菌死亡率高于出生率，种群数量下降 (3)影响酵母菌种群数量的因素可能有养料、温度、pH 空间及有害代谢废物等
实验十八 土壤中动物类群丰富度的研究P75 丰富度：群落中物种数目的多少。 原理：土壤不仅为植物提供水分和矿质元素，也是一些动物的良好栖息场所。研究土壤中动物类群丰富度，操作简便，有助于理解群落的基本特征与结构。 步骤：（1）提出问题 如：土壤中有哪些小动物？它们的种群密度是多少？ （2）制定计划 （3）实施计划 本研究包括三个操作环节：取样、观察和分类、统计和分析。 1 取样，取样后，可采用简易采集法采集动物： 2、观察和分类： 将采集的土壤放在瓷盆内，用放大镜观察，同时用解剖针寻找。发现体形较大的动物可用包着纱布的镊子取出；发现体形较小的动物可以用吸虫管来采集。 3统计和分析：丰富度的统计方法通常有两种：记名计算法和目测估计法 记名计算法：指在一定面积的样地中，直接数出各种群的个体数目，这一般用于个体较大，种群数量有限的群落。 目测估计法：按预先确定的多度等级来估计单位面积上个体数量的多少。等级的划分和表示方法有：“非常多、多、较多、较少、少、很少”等等。 设计数据收集和统计表，分析所搜集的数据。 注意：许多土壤动物有较强的活动能力，而且身体微小，因此不适于用样方法或标志重捕法进行调查
实验十九 探究水族箱（或鱼缸）中群落的演替 要求：（1）水族箱必须是密封的，且是透明的，放置于室内通风、光线良好的地方，但要避免阳光直接照射。 （2）组成成分：非生物成分、生产者、消费者和分解者 （3）各生物成分的数量不宜过多，以免破坏食物链 实验目的：设计一个生态缸，观察这一人工生态系统中群落的演替情况 实验原理：在有限的空间内，依据生态系统的原理，将生态系统具有的成分进行组织，构建一个人工微型生态系统是可能的。但同时，这个人工生态系统的稳定性是有条件的，也可能是短暂的，它会发生群落的演替。 步骤 ： (1)按100cm×70cm×50cm的标准制作生态缸框架。 (2)在生态缸内底部铺垫花土和沙土，花土在下面，一边高，一边低；沙土在上面，沙土层厚5~10cm。在缸内的低处倒入水。 (3)将采集或购买的动物和植物放在生态缸中。(注意：动物的个体不要太大，数量不要太多) (4) 封上生态箱盖。将生态缸放置在室内通风、光线良好的地方，但要避免阳光直接照射。 （5）每一天观察一次生态缸内的生物种类与数量变化，并且进行记录，连续观察一星期。将观察到的结果记录到表中。 |
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