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MPB:山大倪金凤组-​黄翅大白蚁后肠几丁质降解微生物的分离与培养

 宏基因组 2021-02-16

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黄翅大白蚁后肠几丁质降解微生物的分离与培养

Isolation and Cultivation of Chitin-degrading Microorganisms from the Hindgut of Macrotermes barneyi

张硕1, #,蒋宇彤1, #,孙新新1, 2,倪金凤1, *

1微生物技术研究院,微生物技术国家重点实验室,山东大学,青岛市,山东省2转化医学研究联合实验室,聊城市人民医院,聊城市,山东省

*通讯作者邮箱: jinfgni@sdu.edu.cn

#共同第一作者/同等贡献

摘要:黄翅大白蚁是广泛分布于中国南部的一种主要高等培菌白蚁本文介绍以几丁质为碳源从黄翅大白蚁肠分离获得几丁质降解菌株的方法

关键词: 培菌白蚁,黄翅大白蚁,肠道微生物,几丁质降解

背景: 白蚁肠道中存在多种共生微生物包括细菌、真菌和原生动物如鞭毛虫,根据白蚁后肠有无鞭毛虫,可将白蚁分为低等白蚁 (有) 和高等白蚁 (无) 两大类 (Ni and Tokuda 2013)。高等白蚁根据食性分为食木/草白蚁、食土/腐殖质白蚁和培菌白蚁。培菌白蚁属于白蚁科大白蚁亚科,其在巢中专一培养真菌鸡枞菌(Termitomyces) (Aanen等, 2009),两者存在共生互惠关系白蚁取食鸡枞菌的无性孢子小白球菌Termitosphaeria duthiei(Berk.)Ciferri.)获得必需的氮源,而小白球菌在白蚁肠道与木质颗粒混合,经过消化后被排泄到体外形成新的菌圃 (Poulsen 2015)。真菌细胞壁主要由几丁质、葡聚糖和蛋白质组成,因此几丁质代谢培菌白蚁营养利用以及抑制菌圃上其它杂菌生长的关键环节。通过分离培养能够降解几丁质的肠道微生物,为进一步研究培菌白蚁消化利用真菌和抵御杂菌在菌圃的生长奠定基础。

材料与试剂

1.琼脂 (生工生物工程有限公司,产品目录号A505255)

2.酵母粉 (Oxoid, England, 产品目录号LP0021)

3.胰蛋白胨 (生工生物工程有限公司,上海,产品目录号A505247)

4.无机盐 (NaCl,KCl,Na2HPO4,NaH2PO4,KNO3,K2HPO4·3H2O,

MgSO4·7H2O,FeSO4·7H2O,K2HPO4,MgSO4,(NH4)2SO4,CaCO3

MnCl2·4H2O, ZnSO4·7H2O) (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)

5.几丁质 (Sigma公司,美国,产品目录号C7170)

6.盐酸 (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)

7.乙醇 (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)

8.引物合成及PCR产物测序由北京六合华大基因科技股份有限公司完成

9.16S rRNA通用引物 27F (5’-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3’)1492R (5’-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3’)

10. 基因组提取试剂盒 (Bacterial DNA Kit 500,D3350-01,Omega Bio-Tek公司)

11. DNA纯化试剂盒 (Gel Extraction Kit 200,D2500-02Omega Bio-Tek公司)

12. PBS 缓冲液 (见溶液配方)

13. 胶体几丁质 (见溶液配方)

14. 几丁质培养基 (见溶液配方)

15. LB 培养基 (见溶液配方)

仪器设备

1.超净工作台 (品牌AIRTCH型号:SW-CJ-2FD)

2.分析天平 (赛多利斯公司,北京,型号ALC-110.4&1100.2)

3.高压灭菌器 (申安医疗器械厂,上海,型号:LDZM-80L)

4.恒温培养箱 (精宏实验设备公司,上海,型号DNP-9052)

5.恒温摇床 (知楚仪器公司,上海型号:ZQZY-BF8)

6.PCR 仪 (品牌TaKaRa型号:TP600)

7.电泳仪 (六一电泳器材厂公司,北京,型号DYY-10C)

8.恒温金属浴 (博日科技公司,杭州型号:CHB-100)

9.凝胶成像仪 (品牌UVItec型号:97-0094-16)

10. 离心机 (品牌Eppendorf,型号Centrifuge 5417)

11. 厌氧袋 (品牌MITSUBISHI GAS CHEMICAL COMPANY, INC,型号C-43)

软件和数据库

1.利用细菌16S rRNA序列进行菌种鉴定网站

1.1 https://www./identify/

1.2 https://blast.ncbi.nlm./Blast.cgi

2.各国菌种保藏中心网址(可参考各种培养基的配制方法,并且每种微生物都有其对应的培养基)

2.1德国微生物菌种保藏中心 (DSMZ) Leibniz Institute DSMZ-German Collection of Microorganisms and Cell Cultures.

https://www./

2.2日本菌种保藏中心 (JCM) Japan Collection of Microorganisms.

https://jcm.brc./en/

2.3韩国菌种保藏中心 (KCTC) Korean collection for type cultures. https://kctc.kribb./En/Kctc

3.MAGE7.0 软件 下载地址MEGA7.0.26_win64_setup.exe

实验步骤

一、白蚁肠道几丁质降解菌的分离与纯化

1.本实验所涉及白蚁材料为黄翅大白蚁,采自湖南省耒阳县木兰村 (112°967262″E, 26°609833″N)。白蚁后肠样品准备参照前面的方法 (白蚁肠道微生物样品收集与制备)。

2.取各个梯度PBS稀释液 (10-1、10-2、10-3、10-4 和10-5) 200 μl分别涂布于几丁质培养基平板上,在有氧和厌氧两种条件下30 °C培养5 d厌氧条件是将平板放置于厌氧袋中进行培养

3.产生水解圈的单菌落接种至新的几丁质培养基平板,在几丁质培养基平板上进行多次划线培养,直到获得纯菌株。

二、白蚁肠道分离菌株的序列分析

1.用已灭菌的牙签挑取纯化的菌接入15 ml LB液体培养基中,30 °C培养2 d后,在4℃条件下10,000 r/min离心 1 min收集菌体。

2.利用基因组试剂盒提取菌株的基因组DNA,用分光光度计检测DNA纯度,用琼脂糖电泳法检测DNA浓度。

3.利用细菌通用引物27F 和1492R 扩增16S rRNA基因片段,PCR 扩增体系为:细菌基因组DNA (50-200 ng/μl) 1 μl,27F引物1 μl,1492R引物 1 μl,引物浓度为10 μM,dNTPs 4 μl,10× Buffer 5 μl, EasyTaq 1 μl,ddH2O 37 μl。PCR扩增 条件为95 °C预变性5 min;95 °C 30 s,58 °C 45 s,72 °C 2 min,30个循环;72 °C延伸10 min

4.将获得的PCR产物进行琼脂糖 (1%) 凝胶电泳。

5.回收扩增获得的1,500 bp片段,用DNA纯化试剂盒进行纯化(按试剂盒要求进行)

6.回收的PCR片段送上海生工测序。

7.测序结果NCBI系统中进行 Blast比对,下载相似性高的相关细菌菌株序列,利用MAGE7.0 软件邻位法构建系统发育树,确定分离菌株的分类地位

结果与分析

、分离到8株几丁质降解菌

稀释10-3倍数的后肠组织样品在几丁质培养基平板上,长出50个左右的菌落。筛选几丁质降解圈大的菌落,多次在几丁质培养基上划线纯化,最后获得纯培养菌株。纯菌株在几丁质培养基上培养5 d,观察到明显的几丁质降解圈,表明筛选的纯菌株可产生几丁质酶。在有氧条件下分离到5个纯菌株,分别记为chi-1、chi-2、chi-3、chi-4和chi-5;氧条件下分离到3个纯菌株,分别记为an-chi-1、an-chi-2和an-chi-3 (图1)。

图 1. 8株几丁质降解菌的培养特征

二、16S rRNA序列分析

化后的菌株,通16SrRNA基因序,然后其序列行比分析,发现它们属于不同的菌株。它们别与Flavobacterium oceanosedimentumDactylosporangium salmoneumBrevibacillus borstelensisSphingomonas koreensisPaenibacillus odoriferCellulomonas flavigenaStenotrophomonas panacihumiBacillus cereu 相似度最高,相似度均大于97%(表1)。其中杆菌Flavobacterium、指囊菌Dactylosporangium纤维单胞菌Cellulomonas于放线菌菌,鞘胞菌Sphingomonas和寡养单胞菌Stenotrophomonas形菌,短芽杆菌Brevibacillus杆菌Paenibacillus和芽杆菌Bacillus于厚壁菌 (2)。

表1. 8几丁质降解菌16S rRNA 的序列在GenBank中的比对结果

菌株编号

Strains

相似最高菌株

Most similar strain in NCBI

GenBank录号

Accession number

相似性

Similarity (%)

chi-1

Flavobacterium oceanosedimentum

EF592577

99.7

chi-2

Dactylosporangium salmoneum

FJ973607

99.5

chi-3

Brevibacillus borstelensis

D78456

98.2

chi-4

Sphingomonas koreensis

AF131296

98.3

chi-5

Paenibacillus odorifer

CP009428

99.5

an-chi-1

Cellulomonas flavigena

CP001964

98.3

an-chi-2

Stenotrophomonas panacihumi

GQ856217

99.6

an-chi-3

Bacillus cereus

AE016877

99.4

图2. 分离纯化的8株几丁质降解菌基于16S rRNA基因序列构建的进化树

注意事项

1.胶体几丁质配制呈酸性导致配制失败,因而需不断的用去离子水洗几丁质沉淀,将其洗至pH为中性7.0。

2.采集到的白蚁材料尽量在新鲜状态下立即解剖,以保证几丁质降解菌的分离效果。

3.在解剖白蚁前,清洗消毒白蚁体表,以防止体外菌的污染。

4.解剖过程中镊子夹住白蚁头部,用解剖针从尾部缓缓拉出肠道,以保持肠道的完整性。

溶液配方

1.PBS 缓冲液

NaCl 4 gKCl 0.1 gNa2HPO4 0.72 gNaH2PO4 0.12 g,加入灭菌去离子水至终体积为500 ml,用 NaOH 或 HCl 调节 pH 至 7.4。

2.胶体几丁质

称取10 g 几丁质粉末缓慢加入100 ml 盐酸中,4 °C、150 r/min 摇床振摇1 h,使几丁质完全溶解。放于4 °C 冰箱中静置24 h,加入5 倍体积50%乙醇 (体积比) 静置5 h,加蒸馏水定容至1 L,室温条件下10,000 r/min离心 10 min,弃上清液,用去离子水将沉淀反复洗至pH为7.0,配置溶液终浓度为50 g/L,4 °C冰箱保存备用。

3.固体几丁质培养基

胶体几丁质200 ml,FeSO4·7H2 O 0.01g,MgSO4·5H2O 0.5 g,胰蛋白胨1 g,ZnSO4 0.01 g ,KH2PO4 0.3 g,MnCl2 0.01 g,K2HPO4 0.7g,琼脂18 g,加蒸馏水定容至1 L。121°C高压蒸汽灭菌20 min

4.LB液体培养基

NaCl 10 g,胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,琼脂15 g,加蒸馏水定容至1 L。

121°C高压蒸汽灭菌20 min

致谢

本项目获得国家重点基础研究发展计划 (973计划, 编号:2011CB707402),国家自然科学基金 (编号:31970119, 31272370, 30870085) 及山东大学微生物技术国家重点实验室自主设置课题的支持。依据本实验方案我们从培菌白蚁肠道中分离到几丁质降解菌,并发现鉴定到一个新菌种 (孙新新等,2017; Sun等,2018)

参考文献

1.Aanen, D. K., de Fine Licht, H. H., Debets, A. J., Kerstes, N. A., Hoekstra, R. F. and Boomsma, J. J. (2009). High symbiont relatedness stabilizes mutualistic cooperation in fungus-growing termites. Science 326(5956): 1103-1106.

2.Ni, J. and Tokuda, G. (2013). Lignocellulose-degrading enzymes from termites and their symbiotic microbiota. Biotechnol Adv 31(6): 838-850.

3.Poulsen, M. (2015). Towards an integrated understanding of the consequences of fungus domestication on the fungus-growing termite gut microbiota. Environ Microbiol. 17(8): 2562-2572.

4.Sun, X., Li, J., Du, J., Xiao, H. and Ni, J. (2018). Cellulomonas macrotermitis sp. nov., a chitinolytic and cellulolytic bacterium isolated from the hindgut of a fungus-growing termite. Antonie Van Leeuwenhoek 111(3): 471-478.

2.孙新新, 李净净, 宁娜, 谭慧军 and 倪金凤 (2017). 黄翅大白蚁后肠几丁质降解微生物的分离与鉴定. 微生物学通报 44 (7): 1649-1654

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